Лабораторная диагностика колибактериоза



 Род Escherichia в настоящее время объединяет 6 видов бактерий. Практи­чески важное для ветеринарии значение имеет один вид — Е. coli . Естествен­ным местом обитания Е. coli является толстый от­дел кишечника человека, млекопитающих животных, птиц, многих пресмы­кающихся, рыб и насекомых. С испражнениями эшерихии попадают во вне­шнюю среду (почва, вода, пищевые продукты и др.), где могут сохраняться в течение нескольких месяцев.

Являясь представителями резидентной (постоянной) микрофлоры кишеч­ника, эшерихии у здоровых животных старше 20-30, дневного возраста не превышают 1-2% от общей численности бактерий кишечника. Из-за особен­ностей становления кишечной микрофлоры у новорожденных животных пер­вых дней жизни и до 2-3, недельного возраста число эшерихии может достиать 50% и более. Если среди них преобладают энтеропатогенные, токсигенные варианты, а животные имеют недостаточную иммунную защиту (что час­то бывает у молодняка), то развиваются кишечные инфекции эшерихиозной этиологии: колибактериоз телят, поросят, ягнят, кроликов, собак, птиц; у поросят отечная форма. Транслокация эшерихий из кишечника в кровяное русло является причиной развития у разных животных септицемии, у свиноматок симптомокомплекса ММА (метрит-мастит-агалактия), у коров и других жи­вотных мастита, может стать причиной воспаления слизистых оболочек урогенитального, респираторного тракта, осложнять раневые инфекции и т.д.

Колибактериоз — остропротекающая инфекционная болезнь молодня­ка животных всех видов, включая птиц. Протекает в септической или энтеритной (колидиарея) формах, у поросят-отъемышей — еще и в форме энтеротоксемии (отечная форма), у птиц — в виде септицемии, реже — в виде сальпингита и колигранулематоза. Возбудителем болезни являются энте­ропатогенные эшерихий вида E . coli .

    

   Бактериологическое исследование

   Материал для исследования. Свежие трупы мелких животных и птиц целиком, трубчатая кость, доля печени с желчным пузырем, селезенка, почка, сердце, перевязанное лигату­рой у аорты, брыжеечные лимфоузлы, отрезок тонкого кишечника, перевя­занный с двух сторон. При направлении трупов целиком в лаборатории, помимо указанного материала, исследуют еще и головной мозг.

Для прижизненной диагностики в лабораторию направляют фе­калии, кровь.

 

Микроскопическое исследование исходного материала

Из поступившего материала готовят мазки-отпечатки, окрашивают по Граму и микроскопируют. Эшерихий являются мелкими (1,0-3,0 х 0,3-0,6 мкм) прямыми палочками. Грамотрицательные.

 

Выделение и идентификация культур патогенных эшерихий

   Культивирование. Эшерихий — факультативные анаэробы, обладающие дыхательным и бродильным типами метаболизма. Оптимальная температура роста 37- 38° С, рН среды 7,0-7,2, хорошо растут на всех широко используемых в лабораторной практике питательных средах.

Исследуемый материал высевают на плотные селективно-дифференци­альные среды Эндо, или Левина, или Мак-Конки и среду с сорбитом. Посевы инкубируют при 37° С в течение 18-24 часов. По истечении этого сро­ка посевы просматривают и отбирают 10 колоний (5, выросших после посе­ва фекалий или соскобов со слизистой кишечника, и 5 - из других орга­нов, в т.ч. брыжеечных лимфатических узлов), типичных для эшерихий, которые пересевают в МПБ, на МПА и среду Минка (при наличии колоний слизистой консистенции, т.е. тянущихся за петлей, их обязательно отсева­ют на среду Минка) в чашках, разделенных карандашом для стекла на 10 секторов (каждую колонию на 2 среды в отдельный пронумерованный сек­тор). При подозрении или целенаправленном исследовании на отечную бо­лезнь поросят (энтеротоксемию) дополнительно пересевают несколько ко­лоний на кровяной агар в чашке, разделенной на соответствующее количе­ство секторов. С чашек с культурами на среде с сорбитом отсевают 3-4 колонии S-формы серовато-белого цвета в пробирки со скошенным МПА. Культуры, выделенные от птиц, на МПА и среду Минка не пересевают. Их высевают в специальные питательные среды для изучения биохимических свойств (см. ниже).

Характер роста эшерихий на питательных средах. На плотных питательных средах эшерихий образуют круглые с гладкой, вьшуклои поверхностью, ровным краем, диаметром 2-4 мм колонии. На МПА колонии полупрозрачные, сероватого цвета. На средах Эндо, Левина и Мак-Конки за счет ферментации лактозы и закисления среды приобретают цвет индикаторов: на среде Эндо - красные, малиново-красные с металлическим блеском или без него; на среде Левина — темно-синие, фиолетовые, черные с металлическим блеском или без него; на среде Мак-Конки — розовые, крас­ные (отдельные штаммы эшерихий могут не ферментировать лактозу и форми­ровать на перечисленных средах бесцветные колонии). На среде с сорбитом эшерихий серогруппы О157 (варианты О157:Н7 и О157:Н —), вызывающие диарею животных с признаками геморрагического гастроэнтерита, образуют серовато-белые колонии S-формы. Колонии эшерихий других серогрупп — красно-малинового цвета. Колонии штаммов, образующих гемолизин, на кро­вяном агаре окружены зоной гемолиза. В МПБ рост эшерихий проявляется в виде равномерного помутнения среды с образованием легко разбивающегося осадка.

Обнаруженные на данном этапе исследований эшерихий с гемолитичес­кими свойствами, выделенные от поросят-отъемышей с признаками отеч­ной болезни (из содержимого тонкого отдела их кишечника и (или) брыже­ечных лимфатических узлов), относят к возбудителю отечной болезни (энтеротоксемии) поросят.

 

Морфология клеток эшерихий в культуре. Вмазках, приготовленных из культур, эшерихий обнаруживают в виде грамотрицательных, мелких (1,0-3,0x0,3-0,6 мкм) прямых пало­чек с закругленными концами. В поле зрения микроскопа располагаются одиночно, реже попарно. Спор не образуют. Некоторые (штаммы серо групп 08, 09, 020, 0101) образуют капсулу или микрокапсулу. Большин­ство подвижно за счет перетрихиальных жгутиков, но встречаются и не­подвижные.

 

Идентификация эшерихий по ферментативным признакам. Выделенные чистые культуры микроорганизмов с характерными для эше­рихий культуральными, морфологическими и тинкториальными свойства­ми окончательно относят к роду Escherichia и виду E . coli на основании изучения их ферментативных свойств. Ориентируясь на критерии, изложен­ные в табл. 94, к E . coli относят штаммы, образующие индол, не образую­щие H2S, дающие положительную реакцию с метиловым-красным (среда окрашивается в розово-красный цвет) и отрицательную реакцию Фогеса-Проскауэра (среда окрашивается в желтый цвет), не растущие на среде Симмонса, не расщепляющие мочевину, образующие лизиндекарбоксилазу. Большая часть эшерихий образует орнитиндекарбоксилазу, ферменти­рует манит. Все (за редким исключением) сбраживают лактозу.

На данном этапе исследований диагноз на колибактериоз считают установленным в том случае, если выделены чистые культуры Е. coli не менее чем из двух ниже указанных органов и тканей: селезенки, крови, крови сердца, костного мозга, головного мозга свежего трупа животного без изучения па­тогенных свойств штаммов и установления их серогрупповой принадлежно­сти. В остальных случаях устанавливают патогенность выделенных куль­тур.

 

Серологическая идентификация. Важнейшую информацию о патогенных свойствах эшерихий получают при определении их антигенной структуры. Клетки эшерихий содержат три вида антигенов: О — соматический; К — оболочечный и Н — жгутиковый.

О-антиген термостабилен (выдерживает нагревание при 100° С в тече­ние 2,5 часов). Является липополисахаридо-протеиновым комплексом, не­однороден, и на его основе эшерихий делят на группы (более 160 О-групп).

К-антигены поверхностные, оболочечные (кислые полисахариды, редко протеины). По своим свойствам их подразделяют на три типа: L-антиген тер­молабильный, инактивируется при 100° С в течение часа;

 В-антиген в этих же условиях теряет агглютинабелыюсть; А-антиген термостабильный, инак­тивируется при 120° С в течение 2,5 часов, имеется у слизистых капсулообразующих эшерихий О-групп 08,09,020,0101; Н-антиген термолабильный, инактивируется при 60° С в течение 1 часа, протеин, располагается в фимбриях (пилях), пронизывающих клеточную стенку, поэтому в последнее время его чаще называют фимбриальным антигеном.

К-антигены покрывают О-антиген и делают клетки эшерихий иннаглютинабельными в гомологичных О-сыворотках. Они обладают адгезивными свой­ствами, т.е. с их помощью бактерии прикрепляются к эпителиальным клеткам кишечника. Адгезивные антигены являются фактором патогенности, который изучается у чистых культур E . coli в первую очередь.

Н-антиген — жгутиковый, состоит из протеина, термолабилен, имеет несколько десятков разновидностей, определяемых в РА. Для диагностики существенного значения не имеет. Сочетание О-, К- и Н-антигенов харак­теризует серологический вариант (серовар) эшерихий.

Ведущая роль в развитии колибактериоза принадлежит эшерихиям с адгезивными антигенами К88, К99, F41, F18, 987Р, А20 и др. Наличие этих адгезинов можно выявить в реакции агглютинации на стекле или в ELISA-тесте с соответствующими антисыворотками. В нашей стране наи­более распространенным методом выявления адгезивных антигенов у эше­рихий является РА. Для этой цели промышленностью выпускается набор агглютинирующих сывороток к адгезивным антигенам эшерихий. Этот набор включает моновалентные агглютинирующие сыворотки к антиге­нам К88, К99, F41, 987Р, А20 и поливалентную агглютинирующую сыво­ротку, представляющую собой смесь моновалентных сывороток в равных объемах. Сыворотки выпускаются в сухом виде во флаконах по 0,5 см3, что обеспечивает сохранение их специфической активности на срок не менее 5-ти лет.

Постановка РА. В ампулу (флакон) с сухой сывороткой добавляют растворитель (ди­стиллированная вода или физиологический раствор) до первоначального объема сыворотки (0,5 см3), затем растворителем разводят поливалентную сыворотку в соотношении 1:2, а моновалентные — 1:10 (рабочий титр). Разведенные сыворотки хранят в пробирках (флаконах) под резиновой проб­кой при температуре 4-10° С до 3 месяцев. По внешнему виду разведен­ные сыворотки должны представлять собой прозрачную или слегка опалесцирующую бледно-розовую жидкость. Мутные сыворотки, проросшие пле­сенью или другими микроорганизмами, с обильным осадком к употребле­нию непригодны.

Для выявления антигенов К88,987Р и А20 используют культуры эше­рихий, выращенные на МПА или агаре Хоттингера, для обнаружения анти­генов К99 и F41 — на среде Минка. В обоих случаях посевы инкубируют при 37-38° С в течение 20-24 часов.

  Культуры эшерихий, выделенные от птиц, для выявления адгезивных антигенов не используют.

    Выросшие культуры исследуют в РА на стекле вначале с поливален­тной, а затем (в случае положительной реакции) с моновалентными сыво­ротками. С этой целью каплю поливалентной сыворотки наносят на пред­метное стекло, бактериологической петлей берут испытуемую культуру и тщательно растирают с сывороткой. Реакцию учитывают в течение одной минуты при легком покачивании стекла при температуре от 18 до 28° С. Контролем служит испытуемая культура, смешанная с каплей физиологи­ческого раствора (рН 7,2 -7,4) и с каплей нормальной кроличьей сыворот­ки, разведенной 1:10 (для исключения самоагглютинации культуры).

Положительная реакция характеризуется склеиванием микробных кле­ток в зерна или хлопья различной величины и полным или частичным про­светлением сыворотки при отсутствии агглютинации в контроле.

Эшерихии, давшие положительную реакцию агглютинации с одной из сывороток, считают возбудителем колибактериоза.

Наличие адгезивных антигенов у энтеропатогенных эшерихии (ЕРЕС) имеет определенную связь с хозяевами этих возбудителей и О-серогруппами.

Культуры эшерихии на скошенном МПА, полученные после пере­сева серовато-белых колоний со среды с сорбитом (не ферментирую­щие этот многоатомный спирт), исследуют с агглютинирующей коли-сывороткой О157 в РА на стекле. Реакцию ставят с живыми культура­ми. Для исключения самоагглютинации бактериальных клеток куль­туру исследуют с 0,85%-ным раствором натрия хлорида. При отсут­ствии агглютинации в контроле и ее наличии на стекле с коли-сывороткой О157 исследуемые эшерихии относят к возбудителю колибак­териоза.

Таблица 5 - Распространение адгезивных антигенов у ЕРЕС в зависимости от хозяина и О-серогрупп

 

Адгезивные антигены Хозяин Главные О-группы, носители антигенов
К-88 Поросята 08,0141,0147,0149,0157
987Р Поросята 09,020,0141
К99 Поросята, телята, ягнята 08, 09, 020, 0101
F41 Телята 09, 101
18 Поросята н.д.
А20 Телята, ягнята н.д.

 

Со штаммами, давшими отрицательную реакцию агглютинации, а так­же со штаммами выделенными от птиц, проводят дальнейшие диагности­ческие исследования. При этом определяют их О-групповую принадлеж­ность в РА с поливалентными и моновалентными агглютинирующими О-коли-сыворотками или изучают их патогенность в биопробе на белых мы­шах (штаммы, выделенные от млекопитающих) или цыплятах (штаммы, выделенные от птиц).

Серогрупповая принадлежность эшерихий определяется в реакции аг­глютинации на стекле и в пробирочной реакции агглютинации. Для этого выпускаются наборы агглютинирующих О-коли-сывороток, включающие моновалентные сыворотки к О-антигенам 30 основных серогрупп ЕРЕС, и четыре поливалентные, каждая к О-антигенам 6 - 8 серогрупп. Агглюти­нирующие О-коли-сыворотки выпускают во флаконах в жидком виде. При­годные к использованию сыворотки представляют собой прозрачную жид­кость светло-желтого цвета.

Ход определения. 1. Испытуемый штамм выращивают на МПА при 37-38° С в течение 18-24 часов, смывают физиологическим раствором, переносят в стериль­ные пробирки, прогревают в течение часа в водяной бане при температуре 100° С для разрушения поверхностных термолабильных L- и В-антигенов или автоклавируют при температуре 120° С в течение 2-2,5 часов для разрушения термостабильного А-антигена. Если во взвеси бактерий после кипячения или автоклавирования обра­зуются хлопья или зернистость (R-форма), то ее не используют для реакции. Прогретую взвесь бактерий центрифугируют при 3 тыс. об/мин в тече­ние 20 минут, надосадочную жидкость сливают, а осадок используют в качестве антигена для постановки реакции на стекле. Оставшуюся часть антигена разводят стерильным физиологическим раствором по оптичес­кому стандарту мутности до концентрации 500 млн. микробных клеток в 1см3 и используют для постановки пробирочной реакции агглютинации.

2. На предметное стекло наносят по одной капле каждой из четырех поли­валентных сывороток. В каждую из них бактериологической петлей вносят осажденную центрифугированием культуру и хорошо перемешивают. Реак­ция протекает при комнатной температуре, учитывают ее в течение 3 минут. Положительная реакция характеризуется образованием мелкозернистого агглютината и полным или частичным просветлением жидкости. При отрица­тельном результате антиген остается в капле сыворотки в виде равномерной взвеси.

3. Каждый антиген, агглютинирующийся одной из поливалентных сы­вороток, исследуют в реакции агглютинации на стекле с моновалентными, разведенными 1:10, сыворотками, входящими в состав данной поливален­тной сыворотки, а затем в пробирочной реакции агглютинации с каждой сывороткой, давшей положительную реакцию на стекле.

4. Пробирочную РА ставят в обычных серологических или бактериоло­гических пробирках в объеме 1 мл.

Сыворотку разводят стерильным физиологическим раствором от 1:25 до титра, указанного на этикетке. Для приготовления исходного разведе­ния к 2,4 см3 физиологического раствора добавляют 0,1 см3 сыворотки. Во все другие пробирки разливают по 0,5 см3 физиологического раствора. Из исходного разведения 0,5 см3 смеси переносят во вторую пробирку, из вто­рой — в третью и т.д. Каждое разведение готовят отдельной пипеткой. Со­держимое каждой пробирки смешивают. Из первой пробирки удаляют 1,5 см3, из последней — 0,5 см3 антигена, имеющего концентрацию 500 млн. микробных тел в 1 см3.

Одновременно ставят контроли:

а) антиген + физиологический раствор (для исключения самоагглюти­нации);

б) сыворотка в разведении 1:25 без антигена (для исключения флокуляции).

Штатив с пробирками встряхивают и выдерживают 16-18 ча­сов при температуре 37° С и 6-8 часов при комнатной температу­ре.

5. Положительная реакция характеризуется просветлением жидко­сти и образованием на дне пробирки осадка в форме раскрытого зонти­ка, который при встряхивании распадается на мелкие хлопья или ко­мочки.

Реакцию считают отрицательной, когда на дне пробирки образуется оса­док в виде пуговки (диска), который при встряхивании разбивается в рав­номерную взвесь. Аналогичный результат должен быть в контрольных про­бирках.

6. В том случае, когда поливалентные О-коли-сыворотки не агглютини­руют в РА на стекле, антиген, прогретый при температуре 100° С, и суспен­зию из исследуемых бактерий автоклавируют при температуре 120° С в течение 2 -2,5 часов.

Полученный антиген исследуют в пробирочной РА с сыворотками серогрупп 08, 09, О20 и О101.

7. Исследуемый штамм относят к той О-группе, с сывороткой которой он вступает в реакцию до титра или не ниже половины титра сыворотки.

Определение серогрупповой принадлежности эшерихий имеет важное диагностическое значение, поскольку по морфологическим, ферментатив­ным и культуральным свойствам патогенные и непатогенные разновиднос­ти эшерихий не отличаются друг от друга. В то же время установлено, что из более чем 160 О-серогрупп известных в настоящее время эшерихий лишь около 40 являются основными возбудителями колибактериоза (эшерихиоза) у животных и птиц (табл. 6). Отнесение изучаемого штамма к одной из этих серогрупп дает основание для постановки диагноза на колибактериоз.

е) Определение патогенных свойств E . coli. Патогенность изучаемых штаммов эшерихий может быть установле­на в биопробе на белых мышах или цыплятах. Для этого испытуемый штамм выращивают на МПА при 37-38° С в течение 18-24 часов, смывают стерильным физиологическим раствором, готовят суспензию концентрацией 1 млрд. микробных клеток в 1см3 по оптическому стан­дарту мутности и вводят внутрибрюшинно по 0,5 см3 трем белым мышам массой 14 -16 г или трем цыплятам 3 - 4-недельного возраста (при ис­следовании материала от птиц). Наблюдение за зараженными животны­ми проводят в течение трех суток. В случае гибели двух и более зараженных мышей или цыплят выделенный штамм признают патогенным и считают возбудителем инфекции.

Таблица 6 - Основные серогруппы эшерихий, патогенные

Для животных

Виды животных и патология Основные серогруппы ЕРЕС
1. Крупный рогатый скот:    
сепсис у телят О78, О8, О9, О15, О55, О86, O115, О117, О41, Ol 19
диарея у телят О8, О9, О20, О101
мастит у коров О9, О8, О6, О2, О21, О81, О86
2.Свиньи:      
диарея у поросят   О8, О9, О20, О45, О101, О138, О139, О141, О147, О149, О157    
энтеротоксемия у поросят О138, О139, О140, О141
3. Овцы:  
сепсис у ягнят   О78, О15, О20, О35, О75, O114, О115, О119, О125, О137,
диарея у ягнят О9, О8, О101
4. Собаки: энтериты О4, О25, О42
5. Кролики: диарея О85, О2, О101, О6, О18, О128, О55, О44
6. Нутрии: диарея О1, О55, О2, О101
7. Лошади: из репродуктивных органов О18, О2, О6, О147, О141
8. Птица: септицемия  цып­лят, сальпингит кур-несушек, колигранулематоз О1, О2, О78, О15, О101, О115, О41

 

Постановка биопробы завершает общепринятую схему бактериологи­ческого исследования материала на колибактериоз (эшерихиоз). При необ­ходимости могут быть проведены исследования токсигенных свойств изу­чаемых штаммов.

Одним из факторов вирулентности эшерихий является продуцируемый ими экзотоксин. Экзотоксины E . coli относят к энтеротоксинам, а штаммы, их продуцирующие, — к энтеротоксигенным E . coli (ETEC). Выявление ЕТЕС позволяет установить диагноз на колибактериоз при бактериологи­ческом исследовании материала. Кроме того, наличие энтеротоксигенных штаммов необходимо учитывать при конструировании вакцин против ко­либактериоза.

ЕТЕС продуцируют два типа энтеротоксинов: термостабильный (ТС) и термолабильный (ТЛ), отличающиеся друг от друга по молеку­лярной массе, структурной организации, иммуногенности и механиз­му действия.

Синтез ТЛ-токсина детерминирован конъюгативной (передающейся другим, в т.ч. и непатогенным, бактериям) плазмидой. Он секретируется во внешнюю среду, окружающую бактерию, адсорбируется на ворсин­ках эпителиальных клеток тонкого кишечника, где стимулирует аденинлатциклазу. Последняя вызывает увеличение концентрации аденозинмонофосфата, который ведет к гиперсекреции воды и хлоридов в про­свет кишечника и угнетению резорбции натрия. Просвет кишки пере­полняется жидкостью, развиваются усиленная перистальтика кишечни­ка и диарея. Молекулярная масса ТЛ-токсина 24000 Д, он является пеп­тидом и обладает антигенными свойствами. Разрушается при 60° С в течение 30 минут, инактивируется в среде с рН 4,0 -5,0 и под воздей­ствием проназы.

ТС-токсин также находится под генетическим контролем гетерогенной группы конъюгативных Ent-плазмид. Адсорбируясь на клетках эпителия тонкого отдела кишечника, он вызывает гиперсекрецию воды и электроли­тов, путем активации гуанилатциклазы. Молекулярная масса ТС-токсина колеблется от 1000 до 10 000 Д, он является гаптеном и не обладает анти­генной активностью. Сохраняет биологическую активность при темпера­туре 65° С в течение 15 мин., при 100° С - 2 мин. Полностью разрушается при кипячении в течение 30 мин. Устойчив к действию трипсина, проназы, протеиназы, дезоксирибонуклеазы. Имеется две разновидности термоста­бильного энтеротоксина: ТСа и ТСв.

Синтез энтеротоксинов у Е. coli не связан с их серогрупповой принад­лежностью. Так, ЕТЕС-возбудители колибактериоза телят могут принад­лежать к серогруппам О8, О9, О20, О26, О101 и другим, колибактериоза поросят — к О8, О45, О141, О149, О149, О139 и О157.

Энтеротоксигенные E . coli — возбудители колибактериоза новорожден­ных телят, ягнят и козлят, синтезируют в основном ТСа энтеротоксин (сре­ди них такие штаммы встречаются в 86,4 - 100% случаев), редко — ТЛ-энтеротоксин (0 - 9,1%).

Кроме того, ЕТЕС выделяются при колибактериозе поросят и жеребят, при отечной форме у поросят, редко выделяются от щенков.

Данные о корреляции у штаммов Е. coli между адгезивными антигена­ми, энтеротоксигенностыо и хозяевами представлены в табл. 18.

Под влиянием антибактериального или антиадгезивного иммунитета или специфических сывороток ЕТЕС теряют способность к адгезии и не проявляют энтеротоксичности. То же происходит с энтеротоксигенными Е. coli при утрате ими плазмид, детерминирующих адгезивные антигены.

Таблица 7 - Взаимозависимость между адгсзинами,

Энтеротоксинами и хозяевами

 

Тип адгезинов Главные хозяева штаммов

Продуцируемые энтеротоксины

    ТС ТЛ ТСиТЛ
К 88 Поросята + + +
К 99 Телята, ягнята + - -
987 Р Поросята + - -
F41 Телята + - -

     

Поскольку, как отмечалось выше, в большинстве случаев корреляция между энтеротоксигенностыо штаммов эшерихий и их серогрупповой при­надлежностью отсутствует, проводить диагностику заболеваний, вызван­ных ЕТЕС с помощью обнаружения у них О- или К-антигенов, нецелесооб­разно. Для этой цели необходимо выявлять либо адгезины, либо непосред­ственно энтеротоксины.

 

Определение энтеротоксигенных свойств Е. coliпроводят на изолиро­ванных петлях тонкого кишечника кролика или морской свинки. Метод основан на феномене расширения кишечной петли за счет скопления в ее просвете жидкости, что и является показателем токсигенной активности испытуемых штаммов.

При использовании кроликов (классическая модель) отбирают клини­чески здоровых животных массой 2,0-2,5 кг, выдерживают их на голод­ной диете со свободным доступом к воде в течение 36-48 часов, после чего оперируют под эфирным наркозом с фиксацией в спинном положении. Общепринятыми хирургическими методами осуществляется лапаротомия, тонкий кишечник извлекается на стерильную салфетку и орошается физио­логическим раствором через каждые 5-7 минут операции. На кишечник накладывают шелковые лигатуры так, чтобы образовалось 8-12 сегмен­тов по 10 см с промежутками между ними в 3-5 см. В опытные сегменты вводят испытуемый материал в объеме 2 см3 (суспензия испытуемого штам­ма эшерихий в физиологическом растворе концентрацией 1 млрд. микроб­ных клеток в 1 мл. Культуру выращивают на плотных средах в течение 16-24 часов). В контрольные сегменты вводят по 2 см3 стерильного физио­логического раствора. Петли кишечника вправляют в брюшную полость, брюшину с брюшными мышцами зашивают непрерывным швом. Через 16 - 18 часов кроликов усыпляют. Извлекают кишечник, из каждого опытного сегмента жидкость переносят в мерный цилиндр. Индекс дилатации опре­деляют соотношением объема скопившейся жидкости в сегменте к длине этого сегмента. Энтеротоксигенными считают штаммы, дающие индекс дилатации 1 и более.

При использовании морских свинок тест выполняется аналогичным образом. При этом отбирают животных массой 250-500 г. Лигатуры накладывают на тощую кишку так, чтобы образовались сегменты дли­ной 1,0-1,5 см. Исследуемый материал вводят в объеме 0,1см3. Энтеротоксигенными признают штаммы, дающие индекс дилатации 0,5 и бо­лее.

В большей степени научное, чем диагностическое значение имеет обна­ружение непосредственно ТЛ- или ТС-энтеротоксинов. Для обнаружения ТЛ-энтеротоксина в настоящее время используют тест отека лап белых мышей, кожную пробу на кроликах, реакцию агрегации тромбоцитов, ре­акцию отсутствия прилипания лейкоцитов в вате, реакцию латекс-агглю­тинации, РИД по Манчини и др. ТС-энтеротоксин выявляют в анальной пробе на 15-дневных мышатах-сосунах или в пробе на 15-дневных кури­ных эмбрионах.

Патогенные эшерихии сероваров О157:Н7 и О157:Н-, вызывающие ди­арею животных с признаками геморрагического гастроэнтерита, бактерии, образующие адгезивный антиген F 18 и вызывающие отечную болезнь по­росят, продуцируют вероцитотоксин.

 


Дата добавления: 2020-04-25; просмотров: 1568; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:






Мы поможем в написании ваших работ!