Первичного выделения энтеробактерий



МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА

РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Федеральное государственное образовательное учреждение

Высшего профессионального образования

КУБАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ

АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ»

Кафедра микробиологии

Государственное управление ветеринарии

Краснодарского края

Государственное учреждение Краснодарского края

«Кропоткинская зональная ветеринарная лаборатория»

А.А. ШЕВЧЕНКО, В.Н. ШЕВКОПЛЯС,

О. Ю. ЧЕРНЫХ, Л.В. ШЕВЧЕНКО

РЕКОМЕНДАЦИИ

ПО ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКЕ

ЭНТЕРОБАКТЕРИАЛЬНЫХИНФЕКЦИЙ

ЖИВОТНЫХ

                                    

        

КРАСНОДАР, 2008

Авторы:

Шевченко А.А., Шевкопляс В.Н., Черных О.Ю., Шевченко Л.В.

Рекомендации по лабораторной диагностике энтеробактериальных инфекций животных. Краснодар, 2008. 101с.

В рекомендациях освещены возбудители инфекционных болезней животных, вызываемые патогенными энтеробактериями, методы их лабораторной диагностики и питательные среды для выращивания.

       

  Для студентов высших учебных заведений по специальности «ветеринария», аспирантов, научных сотрудников.

 

РЕЦЕНЗЕНТЫ:

И.А. Болоцкий – доктор ветеринарных наук, зав. лабораторией Краснодарского НИВИ.

 

Ю.Ф. Мишанин - доктор биологических наук, академик РАЕ,

профессор Кубанского государственного технологического

университета.

 

 

Представители семейства Enterobacteriaceae являются грамотрицательными, аэробными или факультативно анаэробными палочками. Подвиж­ные за счет перетрихиальных жгутиков, реже — неподвижные. Большин­ство видов хорошо растет при 37° С, однако некоторые виды лучше рас­тут при 25-30° С. D-глюкозу и другие углеводы ферментируют с образо­ванием кислоты, а многие виды, кроме того, и газа. Оксидазоотрицательные, каталазоположительные, редуцируют нитраты в нитриты. Распрост­ранены повсеместно. Встречаются на растениях, у животных (от червей и насекомых до млекопитающих) и человека. Присутствуют в почве, воде и даже в воздухе. Они существуют как симбионты, сапрофиты или пара­зиты. По патогенности для человека, животных и растений весьма разно­образны. Отдельные роды (напр., Erwinia и др.) известны как фитопатогены, причиняющие урон злакам и картофелю, другие (напр., Serratia) рас­пространены в воде, являются фитопатогенами, обитают у насекомых, способны вызывать спорадические инфекции холоднокровных, домаш­них, диких животных и человека. Многие роды имеют медицинское зна­чение, вызывая желудочно-кишечные болезни, являясь причиной оппор­тунистических инфекций.

  В ветеринарии на первое место выступают роды Escherichia , Salmonellaи Yersinia. Кроме того, определенное значение имеют роды Klebsiella , Morganella , Proteus. Эти микроорганизмы вызы­вают желудочно-кишечные болезни и могут быть возбудителями различ­ных внекишечных инфекций, таких, как бактериемия, менингит, инфек­ции мочевыводящих путей, дыхательных путей, раневые инфекции и др.

Лабораторная диагностика включает выявление методом световой микроскопии, выделение чистой культуры возбудителя посевом на питательные среды, иденти­фикацию энтеробактерий по морфологическим, тинкториальным, культуральным, серологи-ческим и патогенным свойствам; дифференциацию родов энтеробактерий.

 

Материал для исследования. Для прижизненной диагностики используют фекалии, кровь, мочу, молоко. Посмертно в лабораторию направляют трупы мелких животных и птиц целиком, трубчатую кость, долю печени с желчным пузырем, селезенку, почку, брыжеечные лимфоузлы, отрезок тонкого отдела кишечника, пере­вязанный с двух концов лигатурой (упаковывается отдельно от остального материала), легкие. При абортах с подозрением сальмонеллезной их этио­логии (отмечают у конематок и овцематок) для бактериологической диаг­ностики направляют абортированный плод или плодовые оболочки, око­лоплодную жидкость, истечения из родовых путей, желудок плода, его па­ренхиматозные органы.

Сбор фекалий осуществляют в стерильную посуду сразу после дефека­ции. Можно собирать материал непосредственно из прямой кишки с помо­щью ректальных ватных или ватномарлевых тампонов, укрепленных на деревянной палочке или проволочной петле. Посев фекалий желательно осуществлять непосредственно после их сбора или в пределах 2-3 часов после сбора. Если это невозможно, материал консервируют хранением при температуре 2-6° С или глицериновой смесью.

Лучшие результаты для получения гемокультуры дает посев кро­ви, взятой в самом начале болезни, однако при отрицательных результа­тах целесообразен повторный посев крови в течение всего периода лихо­радки. В отдельных случаях для посева на гемокультуру можно использо­вать сгустки крови, направляемой для серологических исследований.

Другой материал отбирают общепринятыми способами. Во всех случа­ях его берут от животных, не подвергавшихся в последние 10 дней лечению антибактериальными препаратами.

   Выделение и первичная идентификация культур энтеробактерий. При наличии паренхиматозных органов или целых трупов (плодов) из ис­ходного материала готовят мазки-отпечатки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. Энтеробактерий представляют собой грамотрицательные, прямые палочки длинной 1,0-3,0 мкм и диаметром 0,3-0,6 мкм. Распола­гаются одиночно, реже попарно. Для некоторых характерно наличие кап­сулы или микрокапсулы. Спор не образуют.

При наличии иного материала исследования начинают с посева на пи­тательные среды. Рекомендуемые плотные и жидкие питательные среды для выделения энтеробактерий в зависимости от исследуемого материала и пред­полагаемого возбудителя приведены в таблице 1.

  Для посева проб материалов, обычно содержащих разнообразную мик­рофлору (фекалии, околоплодная жидкость и др.), наиболее целесообразно применять высокоселективные среды (висмут-сульфит агар, агар Плоскирева). Для проб, обычно не содержащих или содержащих незначительное количество микроорганизмов (кровь, паренхиматозные органы и др.), — слабоселективные дифференциальные среды (агары Левина, Эндо). Одна­ко, учитывая возможность выделения из фекалий и другого материала в качестве возбудителей не только патогенных, но и условно-патогенных энтеробактерий, которые могут сильно подавляться на высокоселектив­ных средах, оптимальным является одновременное применение тех и дру­гих сред. При исследовании проб, в которых концентрация возбудителя, скорее всего, низка, целесообразно использовать среды накопления. Фека­лии перед посевом на плотные среды суспендируют в стерильном физиоло­гическом растворе в соотношении 1:10. При взятии материала ректальным тампоном его погружают в среду обогащения (накопления). Пробирки с посевами помещают в термостат, а по окончании инкубации (12-18 час) делают высевы на плотные селективные среды.

Цитратную кровь засевают в жидкие среды накопления в соотношении 1:10. Для посева сгустков крови после их асептического «обведения» и отсасывания сыворотки сгусток растирают в пробирке стеклянной палоч­кой и вносят в среду накопления в соотношении 1:10. После посева крови или сгустков крови и инкубации в термостате (12-18 час) ежедневно в течение 3 дней делают высев на плотные среды. При отрицательных ре­зультатах высевы повторяют еще на 6-е и 10-е сутки.

  Мочу после центрифугирования или без него засевают в среды накопле­ния двойной концентрации в соотношении 1:1.

Посев другого материала осуществляют общепринятыми в бактериоло­гии методами. Посевы инкубируют при температуре 37° С на плотных питательных средах в течение 18-24 часов (48 часов на висмут-сульфит агаре), в средах обогащения максимальный срок инкубации посевов не должен превышать 18 часов (кроме крови). Посевы для выделения иерсиний ин­кубируют при 25-26° С. Чашки с посевами на эти микроорганизмы про­сматривают через 18-20 часов и повторно на вторые сутки термостатирования.

  Характеристика колоний энтеробактерий на плотных селективно –дифференциальных средах представлена в таблице 2. Более подробная харак­теристика колоний энтеробактерий определенных родов изложена в соот­ветствующих разделах.

Колонии, полученные на селективно-дифференциальных средах и ха­рактерные для энтеробактерий, отсевают на питательные среды для получения чистых культур, которые используют для родовой дифференциации энтеробактерий.

 

Таблица 1 - Питательные среды, рекомендуемые для

Первичного выделения энтеробактерий

 

Исследуемый материал

 

 

Энтеробактерии, которые могут содержаться в иссле­дуемом материале

 

 

Плотные (селективные) среды

Жидкие (среды накопления)

 Плоскирева  Висмут-сульфит агар  Левина  Эндо Мак-Копки Минка  Магниевая Селенитовая Мюллера или Кауфмана Киллиана Рапопорт Глюкозный бульон Буферная (Юшенко) К-1   П-1 ЭТ-1
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18
Фекалии, отрезок тонкого кишечни­ка Salmonella Escherichia Klebsiella Yersinia Proteus Serratia Morganella + ++   + ++ + ++++   ++ ++++   ++ ++ + +   + +   + + + + +         +   +   + +
Кровь Salmonella Escherichia Klebsiella Yersinia     ++++ ++++     +         +     +   +     +
Моча Salmonella Escherichia Klebsiella Proteus Yersinia ++++ + +++   + + ++   + + + +   +   + + + + +       +   +       + +
Паренхиматозные органы, трупы, плоды   Salmonella Escherichia Klebsiella Proteus Yersinia ++++ + ++  +   + +++   + + + +   +   + + + + +       +   +      + +
  Легкие Salmonella Escherichia + + + + + +   + + + +          +    
  Молоко Salmonella Escherichia Klebsiella Serratia ++++ + ++++ ++++ ++++   +   + + +             +   +

 

Таблица 2 – Характеристика колоний энтеробактерий на


Дата добавления: 2020-04-25; просмотров: 195; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:






Мы поможем в написании ваших работ!