Правила забора и посева испражнений
Проведение забора материала от больных для бактериологических исследований
Правила:
1. Вид материала определяется клинической картиной заболевания, т.е. он должен соответствовать локализации предполагаемого возбудителя с учетом патогенеза болезни. Например, забираем гнойное содержимое ран, фурункулов, карбункулов, мокроту при бронхо-легочных заболеваниях4; испражнения при заболеваниях ЖКТ; кровь при лихорадочных состояниях и т.д.
2. Материал следует брать до применения антибиотиков или других химиотерапевтических препаратах или через определенный промежуток времени после их назначения, необходимый для выведения препарата из организма (например, антибиотики выводятся из организма через 8-10 часов)
3. Материал необходимо брать в достаточном количестве для исследования, соблюдая правила асептики в процедурном кабинете, в перевязочной или операционной, что бы не загрязнить его микроорганизмами окружающей среды и представителями нормальной микрофлоры человека.
4. Забор материала осуществляют, по возможности, в начальном периоде болезни, т.к. именно в этот период возбудители выделяются чаще, их больше и они имеют более типичную локализацию. Ранний этиологический диагноз предполагает более ранее, следовательно, более эффективное лечение и профилактику.
5. Исследуемый материал в возможно короткие сроки (1-2 часа) следует доставить в лабораторию. Его доставка должна осуществляться средним медицинским персоналом и производиться в лабораторной посуде или специальных контейнерах при сохранении первоначальной температуры материала, или при охлаждении, замораживании сухим льдом (зависимости от характера материала). Любой материал, направляемый в лабораторию, должен сопровождаться соответствующим направлением, в котором указывается фамилия, имя и отчество больного, вид материала, дата и время его взятия, предварительный диагноз заболевания, название учреждения или отделения, подпись врача, направляющего материал на исследование.
|
|
|
6. Любой клинический материал должен рассматриваться как потенциально опасный для человека. Поэтому при его заборе, хранении, доставке, обработке во избежание заражения должны соблюдаться такие же меры техники безопасности, как в бактериологической лаборатории.
7. После исследования остатки материала подлежат уничтожению (автоклавированию или сжиганию), а посуда, контейнеры, инструменты – обеззараживанию.
Правила забора и посева крови на стерильность и гемокультуру
Производится при тифо-паратифозных заболеваниях, сепсисе, менингококковой инфекции или других инфекциях, сопровождающихся лихорадкой, причем на протяжении всего лихорадочного периода болезни, но лучше в начальном периоде или в разгаре болезни (при выраженной бактериемии). Для исследования берут кровь из вены локтевого сгиба, у маленьких детей кровь берут в меньшем количестве из мочки уха, пятки, пальца. Пробы крови отбирают после тщательной обработки кожи с соблюдением правил асептики, одноразовым стерильным шприцем. Посев на питательные среды стерильного материала (кровь или другие, содержащие микробов жидкости у здоровых лиц) также лучше делать у постели больного, либо помещать в стерильную посуду, содержащую вещества, препятствующие свертыванию крови 0,3% раствора цитрата натрия, 0,1% раствор оксалата натрия). Обычно берут 5-10мл крови и засевают во флакон, содержащий 50-100 мл среды. Для этого используют для флакона с питательной средой (один для аэробов, другой для анаэробов). Посев крови производится на жидкие питательные среды – 10% желчный бульон, 1% сахарный бульон, двухфазную среду, а также жидкие и полужидкие среды для культивирования анаэробов в разведении 1:10. Флаконы с питательной средой получают в лаборатории, переливание крови из шприца во флакон необходимо производить над пламенем спиртовки, предварительно сняв иглу. Флакон с посевом направляется в лабораторию, а в вечернее и ночное время помещают в термостат. Студенту важно помнить, что тем раньше от начала заболевания производится посев. Тем больше шансов получить положительный результат. И, наоборот, чем позже взята кровь, тем меньшее количество возбудителя в ней находится и положительные результаты получаются реже. А при нормальной температуре – совсем редко. Следует знать, что для повышения числа положительных результатов гемокультуры рекомендуется, при отсутствии противопоказаний, за 15-20 минут для взятия крови ввести подкожно 1мл 0,1% раствора адреналина, что способствует сокращению селезенки и выходу в кровяное русло возбудителей (например, при тифозно-паратифозных заболеваниях)
|
|
|
|
|
|
Предварительный результат посева при тифо-паратифозных заболеваниях получают через 2-3 дня, а окончательный – через 7-10 дней. Следует помнить, что увеличение кратности посевов крови (три дня подряд на подъеме температуры) значительно повышают частоту выделения микробов из крови. У леченных больных кровь для посева следует брать 5-6 раз.
Правила забора и посева испражнений
|
|
|
Производится при кишечных инфекциях (брюшной тиф, паратифы, шигеллезы, сальмонеллезы и т.д.), а так же при всех болезнях, протекающих с поражением ЖКТ и сопровождающихся расстройством стула. Сбор испражнений производится стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой в количестве 2-3г в стерильные баносчеи из судна, горшка или лотка, а так же непосредственно из прямой кишки с помощью тампонов, металлических петель или трубки ректоскопа. Студенты должны помнить, что даже остаточное количество дезинфицирующих средств на стенках судна или горшка способно значительно изменить как количественный, так и качественный состав микробов в клиническом материале, поэтому их следует тщательно промывать горячей водой. Следует брать слизь, гной, фибринные пленки и избегать примеси крови. При невозможности своевременного посева кала используют консервант – глицериновую смесь, составляющую 2\3 общего объема. Необходимо помнить, что посев испражнений производят прямым способом на чашки Петри со средой Плоскирева, Левина, Эндо, висмут-сульфит агаром или на среды обогащения (селенитовая, среда Мюллера), с последующим пересевом на перечисленные выше среды для выделения энтеробактерий, на щелочной агар (1% пептонную воду с последующим пересевом на щелочной агар) – для вибрионов, МПА – для бацилл, МПА с фурагином – для выделения псевдомонад, ЖСА – для выделения стафилококков, среду Китта-Тароцци – для клостридий.
Студенты должны знать, что при брюшном тифе посевы кала следует проводить со второй недели заболевания, перед выпиской из стационара, а пищевикам и им приравненным лицам – на протяжении всего периода работа в декретированных учреждениях. Положительные результаты копрокультуры при тифо-паратифозных заболеваниях бывают на 2-3 неделе заболевания и реже – в первые дни болезни, а рри других заболеваниях – на 2-3 день после посева.
Правила забора мочи
Производится при воспалительных заболеваниях мочевыводящих путей. Для бактериологического исследования следует брать среднюю порцию утренней мочи после тщательного туалета мочеполовых органов кипяченой водой с мылом. Мочу собирают в стерильную посуду, на исследование отбирают 3-5мл в стерильной, плотно закрывающийся флакон и доставляют в лаборатории. В течение 1 часа. При затрудненном мочеиспускании возможен отбор мочи с помощью катетера. При бактериологическом исследовании определяют степень бактериурии, т.е. количество колониеобразующих единиц в 1мл мочи, методом секреторных посевов мочи. Для этого чашку Петри с питательной средой 3-5% кровяным агаром необходимо разделить на 4 сектора. Бактериологической петлей диаметром 2мм (вместимость 0,005мл) производят посев мочи (30-40 штрихов) на сектор а чашки Петри, после этого петлю прожигают и производят 4 штриховых посева из сектора А в сектор ! и аналогичным образом – из 1 во 2, из 2 в 3.
Наносят по капле мочи на чашки Петри со средами Эндо (для энтеробактерий) и Сарубо (для грибов), а затем засевают штрихом по всей поверхности чашек. По капле материала (0,05мл) засевают в селенитовую среду и сахарный бульон в соотношении 1:9, все чашки и пробирки инкубируют 18-24 часа при 35-37 градусах. После инкубации число выросших колоний на разных секторах подсчитывают и определяют степень бактериурии по таблице.
Наличие в 1 мл мочи у детей 104, а у взрослых 105 микроорганизмов и более, говорит о наличии инфекции в мочевыводящих путях или почках. После подсчета микролных клеток в 1мл мочи проводят выделение чистой культуры микробов для дальнейшей идентификации и определения чувствительности к атибиотикам. Окончательный результат исследования выдается на 4-5 сутки.
Правила забора желчи
Производится при воспалительных заболеваниях желчевыводящих путец. Желчь забирается во время дуоденального зондирования. В отдельные стерильные пробирки собирают все три порции желчи (А, В и С) с количестве 10-20мл и не ранее 8-10 дня нормальной температуры. Конец зонда предварительно обрабатывают спиртом, затем, после выделения 1-2мл желчи, которые не используют для исследования, наполняют пробирки через зонд с помощью стерильного шприца.
При тифо-паратифозных заболеваниях студент должен знать, что положительная биликультура может быть в течение всего заболевания, а так же в периоде реконвалесценции. При этом возбудитель в желчи обнаруживается в ,15 чаще, чем в корпо- и уринокультурах. Однако, из-за опасности дуоденального зондирования в лихорадочном периоде, посев желчи производится только у реконвалесцентов и бактерионосителей. Для посева желчи используют жидкие среды обогащения (селенитовая, Мюллера и т.д.) и плотные дифференциально-диагностические (Плоскирева, висмут-сульфит агар). Материал в количестве 1-2мл вносят в жидкую среду, а 0,5мл наносят на поверхность на поверхность плотной среды, затем равномерно распределяют шпателем.
При воспалительных процессах в желчном пузыре иной этиологической природы необходимо посев материала проводить как при посеве мочи. Учет результатов исследования и выписка производится на 4-5 сутки.
Дата добавления: 2018-09-20; просмотров: 1131; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!