МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ ПВ С ПРЕИМУЩЕСТВЕННЫМ СОДЕРЖАНИЕМ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ



МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ ПИЩЕВЫХ ВОЛОКОН

В соответствии с рекомендациями ФАО/ВОЗ продукт, в 100 г которого содержится 3 г ПВ, рассматривается как источник этого функционального ингредиента, при содержании 6 г ПВ в 100 г продукта он считается обогащенным пищевыми волокнами.

Существуют различные способы обогащения продуктов пище­выми волокнами, каждый из которых обладает определенными достоинствами и недостатками:

• использование в полном объеме сырья, содержащего ПВ;

• добавление вторичных продуктов с высоким содержанием ПВ;

• введение препаратов ПВ.

Среди известных способов обогащения продуктов питания пи­щевыми волокнами наиболее перспективно введение в продукт очищенных препаратов ПВ, позволяющих наряду с обогащением продукта решить технологическую задачу формирования необхо­димой консистенции или улучшения свойств продукта.

Получение препаратов ПВ основано на их выделении из расти­тельного сырья и последующей очистке. Известные методы вьще-ления ПВ включают удаление из измельченной растительной ткани низкомолекулярных веществ: моносахаридов, гликозидов, ал­калоидов, минеральных соединений, либо гидролиз и экстракцию сопутствующего крахмала.

Выбор метода выделения ПВ из растительного сырья определя­ется их содержанием и плотностью упаковки биополимеров кле­точных стенок.

В зависимости от вида перерабатываемого сырья экстракция низкомолекулярных веществ и крахмала ведется водой при нагре­вании (выжимки и вытерки ряда овощей, фруктов, винограда), разбавленными растворами минеральных кислот (серной, хлоридной, фосфорной), щелочами (отруби, мучки, отходы переработки овощей), солями сернистой кислоты, пероксидами, детергентами (стебли злаков, пленки, оболочки зерна, травы, древесина), либо крахмал разрушают амилолитическими ферментами.

Нагревание сырья при температурах около 100 °С с разбавлен­ными растворами кислот приводит к деструкции крахмала, час­тичному гидролизу полисахаридов гемицеллюлоз. Последующая отмывка водой позволяет удалить низкомолекулярные вещества. Выделенные ПВ отличаются от исходного сырья увеличенной внутренней поверхностью, повышенной способностью к сорбции и достаточной чистотой. Одновременно идет полная инактивация микрофлоры, в том числе патогенной, что повышает качество по­лучаемых пищевых добавок.

Выделение ПВ возможно при нагревании сырья с детергента­ми — поверхностно-активными веществами, используемыми в малых концентрациях при небольших температурах. В более жест­ких условиях идет распад макромолекул ПВ.

С помощью ферментативной обработки сырья получают наи­менее деструктированные ПВ. В этом случае его последователь­но обрабатывают амилолитическими (для удаления крахмала), а затем протеолитическими (для удаления белков) ферментами (а-амилаза, глюкоамилаза, протеаза и др., в количествах от 0,4 до 1 мг/дм3).

С использованием ферментативных методов выделены кон­центраты пищевых волокон из вторичных ресурсов переработки зерна, овощей, фруктов и отходов их переработки, вторичных ре­сурсов переработки винограда, трав, тростника и водорослей, лиственной древесины и дана их характеристика.

Известные методы определения содержания ПВ в раститель­ном сырье основаны на максимальном удалении сопутствующих им веществ и сохранении целлюлозы, гемицеллюлоз и лигнинного комплекса.

Злаковые продукты, овощи, фрукты, виноград, орехи являются основными источниками ПВ. Кроме того, значительную часть клеточных стенок древесины, трав, стеблей злаков, кустарников составляют аналогичные компоненты, о чем свидетельствует со­став их гидролизатов. Поэтому ПВ возможно получать не только из пищевого сырья, но и из древесины, трав, стеблей злаков, запа­сы которых практически неисчерпаемы.

Технологии выделения ПВ из нетрадиционного растительного сырья должны обязательно включать удаление из него антипита­тельных веществ типа гликозидов и алкалоидов, очистку от других сопутствующих низкомолекулярных и высокомолекулярных ве­ществ (например, крахмала), снижение содержания минеральных солей. С этой целью возможно использование механических, фи­зических, химических и биологических методов.

МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ ПВ С ПРЕИМУЩЕСТВЕННЫМ СОДЕРЖАНИЕМ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ

Целлюлоза в растениях очень редко находится в свободном со­стоянии, ей, как правило, сопутствуют гемицеллюлозы и лигнин. Если гемицеллюлозы достаточно быстро гидролизуются и целлю­лозу легко освободить от них, то удалить лигнин очень трудно.

Природную целлюлозу можно разделить на два типа: лигноцеллюлозу (древесина, кустарники, листья и трава, морские и речные макро- и микроводоросли и т. д.) и чистую целлюлозу (хлопок, его отходы и лен).

Удаление лигнина очень важный шаг в получении пищевых во­локон целлюлозы. Состав природных целлюлозосодержащих ма­териалов (ЦСМ) представлен в таблице 12.1. Данные, приведен­ные в таблице, свидетельствуют о том, что лигнин присутствует почти во всех растительных материалах, исключение составляет только природой обработанный материал — верховой торф.

Методы делигнификации ЦСМ разделяют на химические и биологические. Предобработка ЦСМ осуществляется физически­ми и механическими методами.

К физическим методам предобработки относятся различные виды облучения и другие способы:

• облучения γ-лучами или потоком электронов;

• обработка микроволновым излучением (2400—2500 мГц);

• нагревание на воздухе или в атмосфере СО2 (100 °С), в воде
или в керосине, охлаждение, воздействие повышенного или пони­женного давления, действие ультразвука.

Эти методы вызывают частичную деградацию сложной струк­туры целлюлозы и лигнина, особенно кристаллической.

К механическим методам предобработки отно­сят различные способы измельчения сухих и влажных ЦСМ:

• на шаровых, коллоидных и вибромельницах;

• в дезинтеграторах;

• на дробилках;

• на вальцах.

Химическая делигнификация ЦСМ осуществляется кипячением или автоклавированием в течение 30—60 мин в раз­бавленных растворах щелочи (1—2 %), обычно NaOH или NH4OH, а также обработкой перегретым водяным паром. Делигнификация может быть проведена сульфатной и сульфитной варкой (способ, принятый в целлюлозно-бумажной промышленности), а кроме того, раствором аммиака, смешанным с пероксидом водорода или надуксусной кислотой или со смесью 99,9%-го уксусного ангид­рида и 30%-го пероксида водорода (1:1 при 80 °С), водными рас­творами этанола или бутанола. Делигнификация этанолом осуще­ствляется при рН 8,2, температуре 150 °С и избыточном давлении 0,5 МПа; бутанолом — в смеси с водой (1:1) в присутствии не­больших добавок (до 0,3 %) НС1, NH3, NaOH или Na2CO3, про­цесс осуществляется в течение 1 ч при 170 °С. В качестве катали­заторов используют H2SO4, FeCl3, NH4H2PO4, антрахинон (при 165 °С, 3 мин), бензол, нитробензол, толуол, фенол, уксусную кис­лоту (при 120 °С, 2 ч). Возможна делигнификация ЦСМ этиленгликолем, озоном.

У нас в стране осуществлена предобработка целлюлозы мето­дом взрывной дефибрации ЦСМ по декомпрессионному принци­пу или паровым взрывом. ЦСМ подвергают кратковременному воздействию перегретого пара под высоким давлением (несколько секунд, 240...300 °С, 3,5—7,5 МПа) в присутствии или отсутствии SO2, далее давление сбрасывают, что вызывает взрыв ЦСМ. Лиг­нин плавится, целлюлоза частично деградирует, а гемицеллюлозы гидролизуются.

К биологическим методам предобработки ЦСМ относят использование лигнолитических микроорганизмов, спо­собных утилизировать лигнин из лигнинцеллюлозы в качестве источника углерода или ферментов, синтезируемых этими микро­организмами. Такие микроорганизмы встречаются среди грибов, актиномицетов, бактерий, дрожжей. Но биологические методы пока недостаточно изучены. Пока они очень длительны (сутки и даже месяцы), но относительно эффективны, поскольку увеличи­вают реакционную способность ЦСМ в несколько раз.

Ферментативная деградация лигнина перспективна и эффек­тивна при переработке древесного растительного сырья, а получа­емые отходы можно использовать для получения кормового белка и сырья для химической промышленности. Однако пока еще не найдены активные продуценты лигнинразрушающих ферментов, хотя исследования в данном направлении ведутся уже более 50 лет. В 50-е годы XX в. было показано, что разложение целлюлозы и лиг­нина древесины осуществляют базидиальные грибы, которые обра­зуют на поверхности гниющего дерева красно-коричневую (бурую) и белую гниль. Возбудители бурой гнили (Brown-rot fungi) активно гидролизуют целлюлозу, гемицеллюлозные комплексы и лишь не­значительно воздействуют на лигнин, т. е. вызывают реакцию деметилирования лигнина. В то же время возбудители белой гнили (White-rot fungi) разрушают древесину, превращая ее в белую массу. Они действуют в первую очередь на лигнин и почти не затрагива­ют целлюлозу. К таким грибам можно отнести следующие виды: Pofyporus versicolor, Pleurotus ostreatus, Poria subacida. Разложение этими грибами лигнина идет окислительным путем, который включает деметилирование, образование дифенолов под действи­ем диоксигеназ. Однако эти и другие грибы вызывают медленное гниение древесины и не используются для практических целей.

В 70—80-е годы было показано, что разрушать лигнин способ­ны также аскомицеты (Ascomycetes: Penicillium, Aspergillus), несо­вершенные грибы (Fusarium, Alternaria), а также актиномицеты ро­дов Streptomyces и Thermomonospora, бактерии родов Achromobacter, Agrobacterium, Pseudomonas.

Необходимо отметить, что состав лигнина разных пород де­ревьев неодинаков: лигнин хвойных пород имеет мономером конифериловый спирт; лиственных пород — конифериловый и синаповый спирты, а травянистых растений — конифериловый и паракумаровый, или n-оксикоричный, спирты:

Фенилпропаноидные единицы в молекуле лигнина различ­ным образом соединены между собой при помощи эфирных и С—С-связей, которые очень устойчивы к воздействию фермен­тов. Лигнин содержит значительное количество функциональных групп, но в связи с большими сложностями извлечения его из дре­весины в нативном виде четких представлений о его строении пока нет.

Жесткая аморфная нестереорегулярная структура лигнина от­личается неупорядоченной полимеризацией радикалов, образо­ванных растительными пероксидами из мономеров-предшествен­ников — кумарового, синапового и кониферилового спирта.

Насчитывают не менее десяти типов связей между фенилпро-пановыми структурными единицами лигнина. Наиболее часто встречаются β-О-4- и С—С-связи типа β-1. В лигнине много метильных, метокси- и гидроксильных групп. Лигнины различного происхождения отличаются главным образом мономерами и соот­ношением этих мономеров в составе того или другого лигнина.

Деградация лигнина — сложный, трудноконтролируемый про­цесс. В нем участвует ряд окислительных ферментов, таких, как лигниназа, фенолоксидазы (лакказа, тирозиназа), пероксидаза и др. Очень важно в этом процессе и соотношение этих ферментов в ре­акционной среде.

Технологические особенности микробной деградации лигнинсодержащего сырья пока еще полностью не изучены, поскольку нигде не получают лигниназных препаратов для последующего использования при обработке лигнина. Поэтому сейчас стоит за­дача поиска природных микробных продуцентов лигнинразруша-ющих ферментов и разработки условий их культивирования для последующего получения технических препаратов и их апробации на различных вариантах лигнинсодержащего сырья.

Изучение биохимического состава различных представителей нетрадиционного для пищевой промышленности растительного сырья, а именно: образцов березовых и сосновых опилок, листьев березы и соломы хлебных злаков, проведенное в МГУПП, показа­ло, что сосновые опилки наиболее богаты целлюлозой, которая составляет в них в среднем 51 %, тогда как в остальных видах ис­следованного сырья содержание целлюлозы меньше и варьирует в пределах 32—43 % в зависимости от вида растительного сырья.

Выделенная из них и очищенная целлюлоза может быть ис­пользована в виде пищевой добавки, способной снижать калорий­ность пищи, быть диспергатором, улучшать товарный вид и каче­ство пищевых продуктов.

С целью поиска активного продуцента лигнинразрушающих фер­ментов, способного быстро трансформировать биополимеры расти­тельного сырья, было испытано более 100 культур микроорганизмов: грибов, относящихся к родам Aspergillus, Penicilliwn, Trichoderma, Fusariwn, Mucor, Rhizopus, Oospora, а также бактерий родов Bacillus, Pseudomonas, Enterobacter, Micrococcus, дрожжей родов Candida, Endomycopsis, Trichosporon и актиномицетов рода Streptomyces. На основа­нии проведенного скрининга микроорганизмов был выбран штамм Streptomyces mersei C-24, способный утилизировать лигнин на 73,9 % в условиях глубинной ферментации на питательной среде следующего состава, %: сосновые опилки — 10, NH4NO3 — 1,5, КН2РО4 — 0,5, MgSO4 • 7H2O — 0,01, кукурузный экстракт — 2, глюкоза — 1.

Из культуральной жидкости S.mersei С-24 путем осаждения белка этанолом при соотношении культуральная жидкость: эта­нол 1:3, отделения осадка фильтрацией и сушкой под вакуумом при температуре 40...50°С был получен ферментный препарат лигниназы, обладающий гемицеллюлазной, лактазной и пероксидазной активностями.

Выделенный ферментный препарат использовали для получе­ния концентрата пищевых волокон с повышенным содержанием целлюлозы (КПВЦ) из сосновых опилок по разработанной тех­нологической схеме, представленной на рисунке 12.3. Обработка растительного сырья ферментным препаратом позволила полу­чить КПВЦ следующего состава, %: целлюлоза — 87, гемицеллюлоза — 11, лигнин — 2.

Исследования функциональных свойств полученного КПВЦ показали, что он может быть использован при производстве функ­циональных пищевых продуктов, в частности хлебобулочных изделий.


Дата добавления: 2018-05-12; просмотров: 934; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:






Мы поможем в написании ваших работ!