Методы определения факторов вирулентности микроорганизмов (адгезивности, ферментов агрессии бактерий: гиалуронидазы, лецитовителлазы, лизоцима; токсигенности, гемолизинов)



 

Адгезивность. Адгезины-поверхностные структуры микроорганизмов (пили, поверхностные белки, тейховые кислоты), способствующие прикреплению возбудителя к клеткам организма и являются обязательными, специфическими факторами, реализирующими патогенность микроба на начальном этапе развития инфекционного процесса. Адгезивность оценивается по способности бактерий прилипать к эритроцитам. Эритроциты крови 1 группы человека смешивают на предметном стекле с чистой исследуемой культурой и инкубируют 30 минут при 37оС. Делают мазок и подсчитывают индекс адгезии (соотношение количества микробов, адгезированных на эритроцитах к количеству эритроцитов, участвующих в адгезии).

Гиалуронидаза.Гиалуронидазной активностью обладают S.aureus, S.pyogenes,, C.perfringensи др. Гиалуронидаза – экзофермент, разрушающий гиалуроновую кислоту, что обеспечивает прохождение бактерий через соединительную ткань.Для определения гиалуронидазы в опытную пробирку вносят бульонную исследуемую культуру бактерий, гиалуроновую кислоту, в контрольную – только гиалуроновую кислоту. После 20-минутной инкубации в термостате в обе пробирки добавляют 15%-ю уксусную кислоту. При наличии у микробов гиалуронидазы жидкость в опытной пробирке остается гомогенной, при отсутствии – появляется муцина. В контрольной пробирке сгусток муцина образуется всегда в результате взаимодействия гиалуроновой и уксусной кислот.

Лецитовителлаза(летициназа) – экзофермент S.aureus обеспечивающий выживание бактерий на коже, в очагах нагноения, расщепляет липопротеид оболочек клеток. Выявляется в виде помутнения или образования радужных венчиков вокруг колоний на желточно – солевом агаре.

Микробный лизоцим – фермент, оказывающий литическое действие на грамположительные микроорганизмы, участвует в аутолизе и делении бактериальной клетки, придает штамму-продуценту селективные преимущества при колонизации кожных покровов и слизистых. Для определения лизоцимной активности тест-микроба(микрококка) засевают на МПА сплошным газоном, сверху в виде бляшек наносят исследуемую культуру (S. aureus). Инкубируют при 37°С в течение 24 час. Появление зон лизиса микрококка вокруг культуры S. aureus свидетельствует о лизоцимной активности микроорганизмов (о лизисе штаммами S. aureus индикаторного штамма микрококков).  

Методы идентификации бактерий по токсигенности (по способности синтезировать экзотоксин).

1. Биологический метод. Испытуемые культуры или токсины в определенных дозах вводят лабораторным животным с последующей регистрацией их гибели (см. практические навыки 8.1) и расчетом летальных доз.

2. Иммунологические методы с применением стандартных антитоксических антител: реакция нейтрализации токсина (см.практические навыки 9.5), ИФА, РИА и РИФ;

3. ПЦР - выявление гена плазмид, детерминирующего синтез экзотоксина.

Экзотоксины синтезируются в основном грамположительными (S.aureus, S.pyogenes, C.perfringens,C.tetani,C.botulinum, C diphtheriae и др.), также грамотрицательными бактериями (E.coli, V. сholerae и др.)

Идентификация бактерий по гемолитической активности.

Бактериальные гемолизины — мембранотоксины, которые вызывают нарушение целостности мембраны эритроцитов и их лизис. Гемолитической активностью обладают многие патогенные бактерии: S.aureus, S.pyogenes, C.рerfringens, C. tetani,C. botulinum, C. diphtheriae и др.

Исследуемую культуру засевают в чашки Петри с 5%-м кровяным агаром, посевы инкубируют при 37°С в течение 24 ч. Гемолизин, выделяемый растущей культурой бактерий, диффундирует в толщу агара и вызывает лизис эритроцитов, что проявляется в виде светлой зоны вокруг колоний.

 

Методы определения персистентных свойств бактерий: капсулообразования, антигенов-ингибиторов фагоцитоза, антилизоцимной, антикомплементарной и антиинтерфероновой активностей

Факторы персистенции обеспечивают способность бактерий длительно переживать в организме путем защиты от механизмов иммунитета. К факторам персистенции относятся поверхностные структуры бактерий (капсула, оболочечные антигены: Vi- антиген, А- и М –белки и др.; пептидогликан) и секретируемые (иммунодепрессантные) факторы (антилизоцимный, антикомплементарный, антиинтерфероновый и др.), антигенная мимикрия (сходство антигенов микроба и человека), образование L- форм (бактерии лишенные пептидогликана – основной мишени действия факторов иммунитета) и др. 

Капсулообразование.Капсула у многих бактерий маскирует микробы от фагоцитов или подавляет фагоцитоз. Для определения капсулообразования применяются следующие методы:

1) бактериоскопический метод. Мазки готовят из патологического материала (мокрота, гной, спинномозговая жидкость) и окрашивают по Граму. Например, S. рneumonia - грамположительные диплококки, окруженные неокрашенной капсулой. Можно покрасить по Бурри-Гинсу. Капсулообразующими являются также C.perfringens, К.рneumonia, B. anthracis, Y. pestis и др;

2) биологический метод. Заражение наиболее чувствительных животных, например, для диагностики сибирской язвы заражают морских свинок, белых мышей или кроликов. После гибели животных, делают вскрытие, готовят мазки-отпечатки из органов. Неокрашенная капсула окружает грамположительных, крупных палочек или стрептобацилл;

3) меченные серологические реакции (РИФ, ИФА и РИА). Например, для выявления капсульных палочек B.anthracis в экссудате, мазок из экссудата обрабатывают капсульной сибиреязвенной антисывороткой и меченной антииммуноглобулиновой сывороткой. Учет реакции проводится по свечению иммунного комплекса (АГ-АТ-меченное АТ) при люменесцетной микроскопии.

Антигенов-ингибиторов фагоцитозаопределяют иммунологическим методом с применением моноклониальных антител против конкретных антигенов бактерий (ИФА, РИФ). Например, принципиальная схема ИФА для выявления А-белка S.aureus в клиническом материале (гной, мокрота и др.) следующая. Моноклональные антитела против А-белка S.aureus фиксируется на твердой фазе. К нему добавляют исследуемый материал с предполагаемом антигеном (А-белок). После инкубации и промывки на фиксированных антителах остаются специфические к ним антигены, если таковые имелись в исследуемом материале. Для обнаружения комплекса АГ-АТ к нему добавляют антииммуноглобулиновую сыворотку (антитела против антител), меченную ферментом (пероксидазой). После второй инкубации и промывки образовавшийся комплекс (АГ-АТ-меченное АТ) можно обнаружить, добавив субстрат к ферменту. Индикатором реакции является способность ферментов давать цветные реакции при взаимодействии с соответствующими субстратами. Учет реакции проводится определением степени мутности реакции на ИФА-анализаторе (спектрофотометре).

Антилизоцимную активностьопределяют по методике Бухарина О.В. Исследуемуюкультуру, напр. S. aureus,засевают на плотную питательную среду с лизоцимом в виде бляшек. Инкубируют при 37°С в течение 24 час. после чего выросшие колонии обрабатывают хлороформом и наносят второй слой агара с тест- культурой микрококка. Учет проводят после инкубации в термостате по росту микрококка вокруг культур, инактивировавших лизоцим, то есть вокруг S. aureus, обладающих антилизоцимной активностью (АЛА).

Определение антикомплементарной активностипроводят по методу Бухарина О.В. Изучаемые культуры, напр., Enterobacterspp, выращивают в течение 18–24 часов при 37°С на питательном агаре. Выросшие колонии инактивируют парами хлороформа и на них наслаивают второй слой агара, содержащий комплемент (сыворотка крови). Данная двухслойная система инкубируется в течение 1 часа при 37°С, во время чего происходит реализация антикомплементарных свойств и продуктов жизнедеятельности исследуемой культуры. Результатом чего является инактивация комплемента вокруг колоний. В дальнейшем наслаивают третий слой питательного агара, содержащего индикаторной культуры Е.coli. После 16–18-часовой инкубации при 37°С, во время которой происходит выявление антикомплементарных свойств, проводят регистрацию результатов по росту индикаторного штамма вокруг исследуемых культур Enterobacter spp., где произошла инактивация комплемента.

Определение антиинтерфероновой активности.Исследуемые культуры, напр., Enterobacter spp, выращивают на питательной среде в присутствии лейкоцитарного интерферона, чашки инкубируют сутки, выросшие культуры инактивируют парами хлороформа, а затем на посев наслаивают агара, содержащего взвесь тест – культуры (Corynobacterium xerosis). Посевы инкубируют 24 часа при 37°С и определяют антиинтерфероновую активность микроорганизмов по наличию роста тест – культуры вокруг колоний испытуемых культур.

 


Дата добавления: 2018-02-28; просмотров: 3231; Мы поможем в написании вашей работы!






Мы поможем в написании ваших работ!