Контроль качества цитологического исследования.
1. Внутрилабораторный контроль качества:
- формирование собственного музея микропрепаратов для самоконтроля постановок (редко встречающиеся патологии, инфекционные агенты и т.д.);
- сравнение результатов цитологических и гистологических исследований (если параллельно взят материал от одного и того же пациента с одинаковой локализацией, либо при обнаружении патологии в цитологии, а гистология взята через 1-2 месяца – необходимо сравнить результат);
- межлабораторный контроль – по Договору аутсорсинга – дублированный анализ в сторонней лаборатории («сличительные испытания»), консультации при внедрении новых методик окрасок и новых методов подготовки препаратов.
2. Внешний контроль качества – участие в системе ФСВОК – ежегодно.
Удаление отходов.
Все образцы, содержащие биологический материал, являются потенциальными источниками инфекции. После окончания работы пробирки, предметные стекла, пипетки и пр. погружают в баки с одним из дезинфицирующих растворов на время, в соответствии с инструкцией к применяемому дез. средству.
Приложения
- Требования к приготовлению цитологических мазков.
2. Методика приготовления цитологических препаратов методом жидкостной цитологии.
3. Методика окраски цитологических мазков по ПАПАНИКОЛАУ (Pap-тест).
4. Методика окраски цитологических препаратов в автомате для окраски мазков эмкостейнер АФОМК-13-ПАП.
|
|
- Методика окраски по Романовскому
- Методика окраски по Грамму
- Памятка по взятию мазка гинекологического и мазка для окраски по Папаниколау
- Образец направительного бланка
- Образец шаблона ответа
- Образец шаблона запроса на получение цитологического препарата
- Образец конечного ответа из ЛИС
- Лист ознакомления
Приложение 1
Требования к приготовлению цитологических мазков:
Мазок должен начинаться на 1 см от узкого края предметного стекла и заканчиваться примерно в 1,5 см от другого края предметного стекла.
Мазок не должен достигать длинного края стекла. Между мазком и краем предметного стекла должно оставаться расстояние около 0,3 см.
Хороший мазок должен быть максимально тонким – максимально приближающимся к однослойному, равномерной толщины (не волнообразным) на всем протяжении.
Мазок из осадка жидкого материала должен заканчиваться у одного из узких краев предметного стекла в виде следа, оставленного как бы тонкой щеткой.
Клетки в мазке должны быть равномерно распределены, все участки мазка должны хорошо просматриваться и не содержать "толстые" участки, содержащие не просматриваемые (плохо просматриваемые) скопления или комплексы клеток.
|
|
Рекомендации для медперсонала (врачей и среднего медперсонала) по преаналитическому этапу исследования представлены в приложении № 7 "Памятка по взятию материала для лабораторных исследований".
Приложение 2
Методика приготовления цитологических препаратов методом жидкостной цитологии.
Основное оборудование :
- Цитоцентрифуга Cyto-Tek (Sakura) на 12 камер.
- Комплект для цитоцентрифуги : камера для образца (1 мл), крышка камеры для образца, держатель для камеры.
- Пипеточные одноканальные дозаторы переменного объема 100-1000 мкл.
Расходные материалы:
- Фильтровальная бумага.
- Пипетки пластиковые объемом 1 мл.
- Наконечники для дозатора пластиковые одноразовые объемом 1000 мкл.
- Предметные стекла.
- Перчатки смотровые латексные.
- Пластиковые контейнеры для сбора и дезинфекции отходов и расходных материалов.
Требования к преаналитическому этапу:
Проба берется в стерильный контейнер с стабилизирующим раствором специальным зондом – щеточкой со съемным наконечником (Rovers Cervix-Brush Combi), позволяющим получить клетки с экзоцервикса, зоны трансформации шейки матки и эндоцервикса.
Методика приготовления препаратов жидкостной цитологии.
1. Флакон установить в шейкер, включить режим «6» (700 оборотов в минуту) на 15 минут.
|
|
2. Собрать систему для центрифугирования: держатель камеры – предметное стекло с маркировкой внутренним номером – фильтровальная бумага – камера для образца.
3. Одноразовой пластиковой пипеткой отбираем 1 мл материала, заполняем им камеру, затем плотно закрываем крышкой.
4. Помещаем заполненные камеры в центрифугу Cyto-Tek, центрифугируем 8 мин на 7000 оборотах в минуту. Данная процедура позволяет получить препарат в виде монослоя клеток.
5. Аккуратно разбираем систему для центрифугирования, достаем предметное стекло.
6. Система для центрифугирования после дезинфекции (Необак 0,2 %, экспозиция 60 мин) утилизируется как отходы группы В.
7. Материал на предметном стекле фиксируется 96% этиловым спиртом.
8. Препарат окрашивается по Папаниколау.
Приложение 3
Дата добавления: 2021-07-19; просмотров: 537; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!