Пропись окрашивания азаном по методу Гейденгайна
Окрашивание срезов проводят следующим образом:
1. Срезы переносят в раствор азокармина и помешают на 1,5- 2 часа в термостат с температурой 56-60 градусов. Срезы для этого помешают в хорошо закрывающиеся биологические стаканчики (или бюксы) с притертой пробкой.
2. Далее стаканчик со срезами охлаждают при комнатной температуре в течение 10-15 минут.
3. Срезы извлекают из стаканчиков (или бюкса), ополаскивают в дистиллированной воде.
4. Срезы переносят в раствор анилинового спирта и выдерживают до тех пор, пока не будут четко выявлены ядра (контроль под микроскопом). Если не удается долго выявить ядра, можно добавить в раствор дистиллированной воды, что ускорит процесс дифференцировки;
5. После дифференцировки ядер быстро промыть в течение 1-2 минуты уксуснокислым спиртом.
6. Протрава срезов в растворе фосфорно-вольфрамовой кислоты в среднем в течении 1-3 часов в зависимости от выявления элементов соединительной ткани под контролем микроскопа.
7. Ополаскивание в дистиллированной воде и переносят в разведенный раствор анилинового синего и оранжевогоG – в течение 2-3 часов, после чего быстро ополаскивают в дистиллированной воде и переносят в 96% спирт для дифференцировки.
Результаты: при правильной дифференцировке коллагеновые и ретикулиновые волокна окрашиваются в синий цвет при отсутствии общего голубого тона, ядра клеток - в красный цвет. Мышечная ткань – в различные оттенки красно-оранжевого цвета.
|
|
|
Примечание. Гистохимические методики и специальные методы для выявления элементов нервной ткани описаны в классических руководствах по гистологической технике [1, 3].
13. КОНСЕРВИРОВАНИЯ И ПРИГОТОВЛЕНИЯ МУЗЕЙНЫХ (АНАТОМИЧЕСКИХ) ПРЕПАРАТОВ**
Приготовление анатомических препаратов с сохранением естественного вида и окраски представляет большой интерес в учебном процессе при показе на практических занятиях и проведении клинико-анатомических конференций, так как они весьма демонстративны. Макропрепараты являются незаменимым пособием на кафедрах нормальной, патологической анатомии, судебной медицины, а также на клинических кафедрах как хирургические болезни, акушерство и гинекология, травматологии и других, где необходимо знать не только объемность процесса, но и характер патологического процесса, её внешние отличительные особенности.
Подготовки посуды и монтаж макропрепарата. При демонстрации макропрепаратов в учебном процессе или показа в музее необходимо чтоб они имели надлежащий эстетический вид. Для этого необходим набор специальной посуды с плотно притирающейся пробкой с широким горлом и различных размеров и форм, в зависимости от объема материала. Необходимо заранее подготовить посуду, номерки и надписи к банкам, фиксирующий макропрепарат материал (стеклянные пластины, пробки для монтирования в нужном положении, толстые и прочные нитки, лучше хирургический шёлк и прочее). Важным вопросом является герметичность крышки посуды, чтоб не было испарения фиксатора. Необходимо помнить, что после погружения макропрепарата в банку не следует её сразу закрывать, следует подождать 1-2 суток, и если фиксатор не изменил окраску или не помутнел, то можно закрывать до герметичности и обычно смазывают специальной замазкой. Возможно применение притертой или закручивающейся заводской крышки.
|
|
|
В помещениях с более низкой комнатной температуры моно применять раствор С.Рожнова и В.Баженова следующего состава:
§ формалин - 1500 мл
§ соль поваренная - 25,0 г
§ вода кипяченная - 85,0 мл
Консерванты для изготовления макропрепаратов должны использоваться после предварительной подготовки: изъятия органа и смыва с её поверхности остатков крови, выяснении необходимого объема материала, который вначале фиксируется в 5% растворе нейтрального формалина в течении нескольких дней (лучше 2-3 дня), затем он переносится в 10% раствор формалина. Появившиеся мелкие пузырьки удаляют легким подогреванием раствора формалина.
|
|
|
Растворы для консервирования и приготовления музейных макропрепаратов
Формалин является наиболее популярным и часто применяемым консервантом макропрепаратов. Однако, учитывая, что формалин обладает сильными дубильными свойствами и тем самым оказывает своё влияние на кожу. Кроме этого, раствор формалина имеет удушливый характер, раздражающий запах, что отражается на состоянии слизистых оболочек, поэтому могут возникнуть проблемы у студентов и лаборантов при неумелом обращении на практических занятиях.
В практической деятельности патологоанатомической службы и судебно медицинских экспертов в качестве консервантов могут использоваться следующие растворы и жидкости:
1) Способ пикелевание, не оказывает отрицательного действия, состав её не сложен, прост в изготовлении.
Состав раствора:
· 10-20% раствор поваренной соли (растворяется в теплой воде);
· 1-4% раствор серной кислоты (лучше 3%).
2) Жидкость проф. Г.М. Иосифова
Состав: спирт и глицерин в равных пропорциях.
3) Жидкость С. Лясковского
Состав:
· Раствор борной кислоты, где 50 г этой кислоты растворяют в 200 мл горячей воды;
|
|
|
· 1000 мл глицерина (смешивают с борной кислотой);
· 50 г карболовой кислоты (предварительно нагреть).
Возможно применение раствора С. Лясковского и по следующей прописи:
· Глицерин - 100 мл;
· Карболовая кислота - 10,0 мл;
· Вода (обычная) - 20,0 мл;
· Сулема - 0,5 г.
4) Жидкость проф. Н.К.Лысенко
Состав:
· Глицерин -500,0 мл;
· Вода (обычная) – 1000,0 мл;
· Уксуснокислый калий 500,0;
· Формалин -40,0 мл
В растворе материал фиксируется в течение месяца, хранится 15-20 лет.
** Кузнецов Л.Е., Хохлов В.В., Фадеев С.П., Шигеев В.Б. /Бальзамирование и реставрация трупов, Руководство. Смоленск-Москва . – 1999. - 478с.
Дата добавления: 2018-11-24; просмотров: 712; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!