Характеристика госпитальной инфекции
Госпитальная инфекция это заболевания или осложнения, развитие которых связано с инфицированием больного во время нахождения его в хирургическом стационаре.
Госпитальную инфекцию называют также нозокомиальной (noso – болезнь, komos–приобретение), тем самым подчеркивается, что развитие заболевания или его осложнений связано с пребыванием в стационаре в результате проведения лечебно-диагностических мероприятий.
Явление возможного инфицирования пациента во время нахождения его в стационаре обозначается как «эффект госпитализации».
Госпитальная инфекция вызывается устойчивыми к антибиотикам и основным антисептикам микроорганизмами. Процесс развития вирулентной, устойчивой к антибактериальным препаратам инфекции называется суперинфекцией.
С увеличением длительности пребывания больного в стационаре опасность заражения возрастает.
В связи с этим основные мероприятия по борьбе с госпитальной инфекцией включают в себя:
1. Сокращение предоперационного койко-дня;
2. Сокращение длительности послеоперационного периода, ранняя выписка пациентов с контролем на дому;
3. Разделение потоков больных, гнойных и чистых палат, отделений, операционных и оборудования;
4. Предупреждение перекрестного инфицирования: внедрение одноразового белья, полотенец, перчаток;
5. Дезинфекция рук персонала и врачей перед прямым контактом с больным и после него;
|
|
|
6. Дезинфекция матрацев, подушек, одеял и др.;
7. Рациональное назначение антибиотиков;
Следует отметить, что согласно приказу МЗ N 720 во всех стационарах создаются комиссии по борьбе с внутрибольничной инфекцией, которые собираются 1 раз в квартал и по мере необходимости, при развитии госпитальной инфекции.
Для профилактики развития госпитальной инфекции все сотрудники стационара согласно приказу МЗ N 720 1 раз в квартал проходят исследование на носительство патогенного стафилококка.
Контроль обсемененности разных объектов и воздуха в хирургических отделениях осуществляется 1 раз в месяц. Выборочный контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, рук хирурга, кожи, операционного белья и др. проводят 1 раз в неделю.
В хирургических стационарах России больные с гнойными заболеваниями составляют 14—15 %.
Внутрибольничные инфекции в хирургических клиниках вызывают различные микроорганизмы. Клинически это проявляются синдромами нагноений и септических поражений. Наиболее часто возбудителями внутрибольничных инфекций являются резистентные к антибиотикам штаммы кишечной палочки, золотистого стафилококка, синегнойной палочки, протея, кишечной палочки, клебсиелл, грибов кандида.
|
|
|
По источнику инфекции делят на экзогенные и эндогенные. Пути
проникновения эндогенной инфекции: лимфогенный, гематогенный, по
межклеточным пространствам, особенно рыхлой ткани, контактный (например, с хирургическим инструментом). Для хирургов особой проблемы эндогенная инфекция не представляет, в отличие от экзогенной. В зависимости от пути проникновения экзогенная инфекция подразделяется на воздушную, капельную, контактную и имплантационную. Пыль увеличивает вероятность возникновения заражения из воздуха. Очень долго считалось, что воздушная инфекция не опасна при операциях,
однако с развитием трансплантации и применением иммунодепресантов
операционные стали делить на 3 класса:
Первый класс - не более 300 микробных клеток в 1 кубическом метре
воздуха.
Второй класса - до 120 микробных клеток - этот класс предназначен для
сердечно-сосудистых операций.
Третий класс (класс абсолютной асептики ) - не более 5 микробных клеток в кубическом метре воздуха.
Этого можно добиться в герметичной операционной, с вентиляцией и стерилизацией воздуха, с созданием внутри операционной зоны повышенного давления (чтобы воздух стремился из операционных наружу), а, также, установлением специальных дверей-шлюзов.
|
|
|
Капельная инфекция - это те бактерии, которые могут выделяться из дыхательных путей всех, кто находится в операционной. Микробы
выделяются с водяными парами, водяной пар
конденсируется и вместе с этими капельками микробы попадают в
рану. Чтобы уменьшить опасность распространения капельной инфекции в
операционной не должно быть лишних разговоров. Хирурги должны
пользоваться 4-х слойными масками, которые уменьшают вероятность
инфицирования капельной инфекцией на 95%.
Контактное и имплантационное заражение связано с чисто врачебными манипуляциями.
С целью создания условий, предупреждающих микробное загрязнение операционных помещения операционного блока делятся на 4 зоны.
Зона стерильности – это операционная и стерилизационная. Микробное загрязнение воздуха, стен, окон и пола этих помещений должно быть минимальным. Инструментарий, операционное бельё, перевязочный и шовный материал должны быть стерильными. Доступ персонала в эту зону резко ограничен. Ходьба и разговор медперсонала без надобности запрещены.
Вторая зона – зона строго режима. Сюда входят помещения, которые непосредственно соединены с операционной. Это предоперационная и наркозная. Доступ персонала в эти помещения ограничен. Они должны находиться в халатах, шапочках, масках, бахилах. Здесь происходит переодевание, подготовка рук к операции, облачение в стерильную одежду и т.д.
|
|
|
Третья зона – зона ограниченного режима. К ней относятся все вспомогательные помещения операционного блока и анестезиологической службы.
Четвертая зона – общебольничного режима. Сюда входят помещения, доступ в которые возможен без особых ограничений.
После предоперационной подготовки и премедикации, постовая медицинская сестра транспортирует больного на каталке в операционный блок, переодевает в чистое стерильное бельё (включая бахилы и шапочку), перекладывает на каталку оперблока в четвёртой зоне и передает его санитарке, которая транспортирует больного в операционную и укладывает на операционный стол. После операции больного передают медицинскому персоналу отделения также в четвёртой зоне, то есть соблюдается ограничительный режим операционно-перевязочного блока следуя правилам асептики и антисептики.
Работу операционно-перевязочного блока организует старшая операционная медсестра. Во время операции ответственным лицом за соблюдение правил асептики и антисептики, пребывания и поведения в операционной медицинского персонала является операционная медсестра. Её требования являются законом для всех участников операции. Она также отвечает за подготовку материалов и инструментов к операции.
Уборка операционной
Текущая уборка. Текущую уборку проводят в процессе операции, когда санитарка подбирает упавшие на пол шарики, салфетки, вытирает излившуюся на пол кровь, экссудат.
Уборка обязательна после каждой операции, она заключается во влажной уборке пола, обтирании клеенки на операционном столе (1%-ный раствор хлорамина; 0,2%-ный раствор сульфохлорантина; 2%-ный раствор дихлор-1 и т. д.) дважды ветошью, смоченной в одном из вышеперечисленных растворов. Если в чистой операционной по каким-либо причинам была произведена гнойная операция (например, перитонит) или произошло загрязнение кишечным содержимым (кишечная непроходимость), то организуют внеплановую генеральную уборку (дезинфекцию).
Существенные особенности имеет уборка после операции у больного с анаэробной инфекцией. Инструменты, перчатки, фартуки заливают 5%-ным раствором лизола на 2 ч или 6%-ным горячим раствором перекиси водорода, после чего санитарка, надев прочные резиновые перчатки, моет их с мылом и щетками. Необходимо надевать респиратор типа РУ-60. Операционное белье замачивают на 9—10 ч в 5%-ном растворе лизола, 6%-ном растворе перекиси водорода с 0,5%-ным раствором синтетического моющего порошка и сдают в прачечную в отдельном непромокаемом мешке из клеенки с запиской о том, что белье загрязнено анаэробными микробами. Мешки после сдачи белья дополнительно дезинфицируют, если возможно — подвергают газовой стерилизации. Перевязочный материал используют однократно, во время операции его собирают в специально выделенный бикс и уничтожают. Уборочный материал (ведра, тазы, ветошь) после использования автоклавируют. После уборки инструментов, перчаток, фартуков, белья производят генеральную уборку.
Заключительная (ежедневная) уборка. Независимо от того, были ли операции или нет, заключительную уборку проводят ежедневно. В плановой операционной это делают в конце рабочего дня, в экстренной — перед сменой бригады дежурных операционных сестер.
Заключительная уборка операционной включает мытье полов и влажное протирание стен, подоконников, радиаторов отопления, мебели, оборудования мыльно-содовым раствором. Остатки раствора удаляют чистой водопроводной водой. Во время уборки у санитарки должны быть два ведра или два таза: первый с мыльно-содовым раствором, другой с горячей водой для ополаскивания ветоши. Ветошь надо полоскать часто, воду менять, как только она загрязнится. В некоторых операционных имеется специальный вентиль для присоединения шланга, с помощью которого струей воды обмывают потолок, стены, пол. Всю мебель сдвигают в одну половину комнаты и моют освобожденную половину, затем мебель и аппаратуру протирают специально выделенной чистой тряпкой. Заканчивают уборку мытьем второй половины операционного зала. Ежедневную уборку операционного блока производят в строгой последовательности: начинают ее с операционной и заканчивают помещениями, расположенными при выходе из блока (предоперационная, тамбур, коридор).
Генеральная уборка. Генеральная уборка (дезинфекция) операционной может быть плановой и внеплановой. Внеплановую дезинфекцию производят после операции, сопровождающейся сильным загрязнением гноем, кишечным содержимым, в случаях анаэробной инфекции. Плановую дезинфекцию производят 1 раз в неделю в свободный от операций день, который назначается старшей операционной сестрой с ведома заведующего отделением. В помещениях предварительно проводят уборку мыльно-содовым раствором. Для дезинфекции используют смесь, состоящую из 6%-ного раствора перекиси водорода с 0,5%-ным моющим средством или 5%-ным раствором хлорамина; можно использовать 0,5%-ный активированный раствор хлорамина и 20 мл 10%-ного раствора нашатырного спирта.
Дезинфекцию проводят в два этапа. Сначала дезинфицирующим раствором с помощью гидропульта опрыскивают потолок, стены, мебель, пол. Затем с помощью швабры или тряпки, намотанной на длинную палку, протирают потолок и стены, удаляя остатки распыленного раствора. Делать желательно это тотчас, во избежание подтеков антисептика. Второй этап предусматривает обычную большую уборку с обязательным соблюдением очередности мытья: сначала потолок, стены, окна и подоконники, затем мебель, оборудование и пол. Дезинфекцию заканчивают мытьем и уборкой подсобных помещений операционного блока. Персонал при проведении уборок надевает чистые халаты, обувь, респираторы, защитные очки, клеенчатые фартуки, перчатки. После дезинфекции помещение облучают ультрафиолетовым светом (прямым или отраженным) одним из облучателей (ОБН-200, ОНН-300 на 300 кв.м или ОБН-150, ОБН-300 на 60 кв.м); помещение закрывают на ключ и оставляют на 2 ч.
Соблюдение дезрежима в операционном блоке
Операционный блок отделен от остальных помещений хирургического отделения тамбуром, оборудованным источниками бактерицидного ультрафиолетового излучения.
Температура в операционной должна быть 21—25 град.С , влажность 50—65 %, воздухообмен — 6—10-кратный в течение часа. Микроклимат операционной поддерживается с помощью кондиционера, что позволяет очищать воздух от пыли и значительной части микрофлоры. Для удобства уборки все углы и соединения стен с перекрытиями должны быть закруглены. Дверцы шкафов, наличники окон и двери изготавливают из гладких материалов. Стены покрывают плиткой или красят масляной краской, пол выкладывают плиткой или антистатическим пластиком, создавая небольшой уклон к центру, где расположен сток для воды.
Окна операционной должны иметь малое число переплетов, легко открываться внутрь. Для снижения микробной обсемененности в блоке устанавливают воздухоочистители передвижные рециркуляционные (ВОПР-0,9 и ВОПР-1,5).
Строго разделяют операционные для чистых и гнойных операций. Хирургические инструменты, перевязочный материал, белье для гнойной операционной хранят отдельно. Сочетание работы персонала в чистой и гнойной операционных не рекомендуется.
В состав операционного блока входит предоперационная, которая служит для подготовки персонала и больного к операции. Двери, ведущие в предоперационную и из нее в операционную, должны быть достаточно широки, чтобы пропустить каталку и идущего рядом человека. И всегда закрыты. Стены и пол в предоперационной отделывают так же, как и в операционной. В предоперационной устанавливают 3—4 раковины для мытья рук, над каждой раковиной — кран-смеситель, который открывается локтем. Рядом с каждой раковиной размещается зеркало.
Работа операционной строится следующим образом:
-накануне проводят уборку операционной;
-проверяют наличие подобранных накануне инструментов и приступают к их стерилизации;
-подготавливают щетки для рук: закладывают их в эмалированный таз с крышкой или кастрюлю, заливают водой с 2%-ным раствором соды и кипятят в течение 15 мин, после чего воду сливают и хранят щетки в этой посуде с крышкой. От кипячения щетки быстро портятся, поэтому после однократного их кипячения дальнейшую дезинфекцию проводят в дезинфицирующем растворе (хлорамин, дезоксона 0,1%-ный раствор; 3%-ная перекись водорода);
-сестра проверяет наличие всех необходимых приборов в операционной, расставляет мебель, придает операционному столу и лампам нужное положение;
- В день операции сестра переодевается, надевает операционную одежду, дезинфицирует тазы (1%-ный раствор хлорамина, 0,2%-ный раствор сульфохлорантина, 1%-ный раствор хлоргексидина), готовит растворы для мытья рук;
Предварительно проверив, тщательно ли убраны волосы и подстрижены ногти, сестра моет руки с мылом, берет из бикса стерильную маску и надевает ее, закрывая нос и рот;
-обработав руки, операционная сестра идет в операционную. Санитарка открывает крышку стерильного бикса с халатами. Операционная сестра берет из бикса свернутый халат, разворачивает его, следя за тем, чтобы наружная поверхность стерильного халата не коснулась соседних предметов. Санитарка подтягивает халат сзади за края и завязывает тесемки;
-сестра вынимает из кармана халата пояс, удерживает на расстоянии 30—40 см от себя так, чтобы свободные концы пояса свисали. Санитарка осторожно берет концы пояса и, не касаясь стерильного халата, заводит кзади и завязывает. Тесемки на рукавах операционная сестра завязывает сама, или ей помогает другая сестра, подготовившаяся к операции;
-сестра достает из бикса перчатки без посторонней помощи. Края перчаток отвертывает кнаружи в виде манжеты, большим и указательным пальцами правой руки захватывает отвернутый край левой перчатки и натягивает ее на левую руку. Затем левую руку (одетую в перчатку) подводит под отворот тыльной поверхности правой перчатки и натягивает последнюю на правую руку. Не меняя положения пальцев, отвернутый край перчатки отворачивают на место. Края перчаток должны располагаться поверх завязок рукавов халата. Затем сестра берет большой шарик, обильно смоченный в спирте, тщательно обтирает свои перчатки. Руки в стерильных перчатках следует держать согнутыми в локтях и приподнятыми чуть выше пояса. Если по какой-то причине операционная сестра ждет хирурга и не занята, то перчатки на руках для защиты от воздушной инфекции следует обернуть стерильной марлей, салфеткой, смоченной в 96%-ном спирте;
-после надевания стерильного халата и перчаток операционная сестра может приступает к накрытию операционного стола.
Подготовка инструментальных столов (большого и малого)
Операционная сестра должна так рассчитать время, чтобы инструменты были разложены на большом столе за 20 мин до одевания хирурга.
Из бикса с бельем сестра достает простыню и накрывает ею в два слоя большой инструментальный стол. Вторую простыню она кладет таким образом, чтобы одна ее половина закрывала стол, а вторая была свернута валиком на дальнем краю стола. Это необходимо, чтобы в дальнейшем закрыть расположенные на столе инструменты.
Сестра разбирает инструменты и раскладывает посередине инструментального стола. Каждому виду инструментов отводится свое место, причем инструменты, применяемые наиболее часто, кладут ближе к краю стола.
Правый край стола не закрывают сверху простыней, а используют для размещения широкогорлых банок с антисептиками и стерильного лотка с раствором антисептика, в котором находятся скальпель и иглы. В лоток кладут стерильный корнцанг или длинный пинцет для захватывания нужного предмета и перенесения его на малый стол.
Стерильные наборы для переливания крови и трахеотомии рекомендуется хранить отдельно, завернутыми в стерильные простыни.
Когда все инструменты разложены, сестра покрывает их сложенной вдвое простыней, причем края ее должны свисать с краев стола, по углам должны быть наложены зажимы. После того как на большом столе все приготовлено, операционная сестра раскладывает инструменты на малом инструментальном столике. Операционная медсестра перекладывает корнцангом необходимые инструменты с большого инструментального стола на малый и располагает их в строгом порядке. По переднему краю располагают инструменты, постоянно необходимые хирургу. Инструменты с переднего края стола берут сам хирург и помощник, а сестра только поддерживает порядок на столе и восстанавливает правильное размещение инструментов.
Задний край стола находится в полном распоряжении операционной сестры, и хирург его не касается. Там располагаются запасные инструменты, готовые к работе, но не требующиеся в данный момент, шовный материал и ножницы операционной сестры, с помощью которых она нарезает нити нужной длины.
Операционная сестра не имеет права касаться использованных и запачканных кровью инструментов; в крайнем случае, она убирает их корнцангом. После того как сестра готова к операции, она помогает хирургу. Хирург обрабатывает руки, и сестра помогает ему надеть халат.
Одевание хирурга. Сестра подает развернутый халат хирургу таким образом, чтобы он мог просунуть сразу обе руки в рукава, после чего отбрасывает верхний край халата ему на плечи. Санитарка сзади завязывает тесемки и пояс. После надевания халата меняют маску на стерильную: для этого сестра подает маску, держа ее пальцами за кончики тесемок, санитарка завязывает их сзади на голове.
Методы асептики
Как мы уже говорили, асептикой называется метод, обеспечивающий предупреждение попадания микробов в оперированную рану, а антисептика - это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране. Выделяют виды асептики и антисептики: механический, физический, химический и биологический. В практике обычно сочетают разные виды.
Механический метод – уничтожение (очистка) от микроорганизмов механическим способом, то есть удаление с хирургических инструментов загрязнений, а из раны участков нежизнеспособных тканей, сгустков крови, гнойного экссудата. Механические методы являются основополагающими — при их непроведении все другие методы оказываются не эффективными.
Механический метод включает:
· Обеззараживание и очистку хирургических инструментов
· туалет раны (удаление гнойного экссудата, удаление сгустков, очищение раневой поверхности и кожи) - выполняется при перевязке;
· первичная хирургическая обработка раны (рассечение, ревизия, иссечение краёв, стенок, дна раны, удаление крови, инородных тел и очагов некроза, восстановление повреждённых тканей - наложение шва, гемостаз) - позволяет предотвратить развитие гнойного процесса, то есть превращает инфициованную рану в рану стерильную;
· вторичная хирургическая обработка (иссечение нежизнеспособных тканей, удаление инородных тел, вскрытие карманов и затёков, дренирование раны) — производится при наличии активного инфекционного процесса. Показания - наличие гнойного очага, отсутствие адекватного оттока из раны, образование обширных зон некроза и гнойных затёков;
· другие операции и манипуляции (вскрытие гнойников, пункция гнойников («Ubi pus — ubi es» — «видишь гной — выпусти его»)).
Физический метод – уничтожение микробов, а также создание в ране неблагоприятные условия для развития бактерий и всасывания токсинов и продуктов распада тканей с помощью физических факторов.
· факторы внешней среды (промывание и высушивание). При высушивании образуется струп, способствующий заживлению;
· сорбенты (углеродсодержащие вещества в виде порошка или волокон);
· дренирование (пассивное дренирование — закон сообщающихся сосудов, проточно-промывное — минимум 2 дренажа, по одному жидкость вводится, по-другому выводится в равном объёме, активное дренирование — дренаж с насосом);
· технические средства
o лазер — излучение с высокой направленностью и плотностью энергии, результат — стерильная коагуляционная плёнка
o ультразвук — кавитационные пузырьки и H+ и OH−,
o УФ — для обработки помещений и ран,
o гипербарическая оксигенация,
o рентгенотерапия — лечение глубоко расположенных гнойных очагов при остеомиелите, костном панариции).
Химический метод- уничтожение микроорганизмов на операционных предметах и инструментах, а также в ране, патологическом очаге или организме больного с помощью различных химических веществ.
Выделяют: дезинфицирующие средства (используются в асептике для обработки инструментов, мытья стен, полов и т. д.), собственно антисептические средства (наружно, для обработки кожи, рук хирурга, промывания ран и слизистых). Несколько отдельно стоят химиотерапевтические средства. Применительно к больному различают их местное применение: а) использование повязок с антисептическими препаратами при лечении ран и ожогов; препараты могут применяться в виде растворов (ими промывают рану во время перевязки), мазей и порошков; б) введение растворов антибактериальных препаратов в рану, закрытые полости. Общее применение: в) приём антибактериальных средств внутрь (в виде таблеток, парентерально) с целью воздействия на микрофлору больного после всасывания препарата в кровь.
Биологическая антисептика — применение биопрепаратов, действующих как непосредственно на микроорганизмы и их токсины, так и действующих через макроорганизм. К этой группе относятся антибиотики и сульфаниламиды, оказывающие бактерицидное или бактериостатическое действие; ферментные препараты, бактериофаги — пожиратели бактерий; антитоксины — специфические антитела (средства для пассивной иммунизации), образующиеся в организме человека под действием сывороток, анатоксины (средства для активной иммунизации), иммуностимулирующие средства. Антитоксины являются одним из основных факторов лечения при столбняке, дифтерии, ботулизме, газовой гангрене и других заболеваниях. В этой группе особо следует остановиться на антибиотиках.
По спектру антимикробного действия антибиотики отличаются довольно существенно, кроме того, воздействуя на микроорганизм, антибиотики вызывают либо бактериостатический, либо бактерицидный эффект.
В процессе использования антибиотиков к ним может развиться устойчивость микроорганизмов. Появление резистентных штаммов - серьёзная проблема современной медицины. Чтобы избежать (или замедлить) этот процесс, существуют принципы лечения антибиотиками:
· тщательное обоснование назначений;
· обоснование выбора антибиотика на основании лабораторных данных, характерной клинической картины, индивидуальной чувствительности, особенностей проникновения в различные ткани, а также возраста больного;
· назначение адекватной дозы (всегда терапевтическая, отмена должна быть резкой);
· оптимальный курс лечения (в среднем неделя, возможно удлинение, но меньше нельзя, так как клиническое выздоровления наступает раньше, чем лабораторное - опасность рецидива);
· выбор пути и частоты введения (зависит от локализации процесса и длительности действия антибиотика);
· обязательная оценка эффективности действия (если не эффективно, рекомендуется комбинирование антибиотиков друг с другом, либо с сульфаниламидами, но больше двух препаратов одновременно назначать опасно из-за выраженных побочных эффектов).
До сих пор мы касались и обсуждали чисто врачебные вопросы асептики и антисептики. В больших стационарах имеется должность ответственного за операционный блок и будущим врачам целесообразно ознакомиться с некоторыми практическими вопросами подготовки хирургических инструментов, медицинских приборов и белья для контроля за соблюдением алгоритма работы старшей операционной сестрой.
Ключевой, самый ответственный и трудоемкий вопрос для асептики это вопрос стерилизации–процесса уничтожения всех форм микробной жизни, включая споры и грибы. Он включает предстерилизационную очистку медицинских изделий , контроль качества предстерилизационной очистки и саму стерилизацию.
Предстерилизационная очистка, как уже ясно из названия, является подготовительным этапом к стерилизации.
Этапы предстерилизационной очистки:
1.Дезинфекция медицинских изделий путем погружения в 3% раствор хлорамина или 1% раствор гипохлорита кальция на 60 минут
2.Тщательное промывание изделий под проточной водой с помощью щеток
3.Замачивание изделий в горячем моющем растворе(40-500С) в течение 15 минут в моющем растворе( 0,5% р-р порошков «Астра», «Лотос» и др.).
4.Кипячение в течение 15 мин. в 1,5% растворе моющего средства или 2% растворе питьевой соды.
5.Мойка в этом растворе щётками или ершами.
6.Промывание инструментов под проточной водой.
7.Ополаскивание изделий в дистиллированной воде 1 мин. для обессоливания.
8.Подсушка инструментов в сухожаровом шкафу при температуре 80-90 0С в течение 15-20 мин.
Предстерилизационной обработке должны подвергаться все изделия медицинского назначения с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. Проверку качества предстерилизационной обработки медицинского инструментария проводят с помощью постановки проб на наличие остатков крови и полноту отмывания изделий от моющих щелочных компонентов. Контролю подлежит 1 % каждого вида изделий, обработанных за сутки.
Для предотвращения коррозии (ингибиция) при использовании моющего раствора применяют ингибитор коррозии - 0,14% олеат натрия, можно погрузить инструменты в 1%-ный раствор бензоата натрия при комнатной температуре на 60 мин.
Инструменты с видимыми пятнами коррозии, с наличием оксидной пленки можно, также, очистить более дешевым водным раствором, содержащим уксусную кислоту.
Приготовление раствора: уксусная кислота — 5 г, хлорид натрия — 1 г, вода дистиллированная — до 100 мл. Достаточно погрузить инструменты в приготовленный раствор температурой 20 С0 на 2—6 минут.
Контроль качества предстерилизационной очистки
Пробы для осуществления контроля качества предстерлизационной очистки:
Фенолфталеиновая - на качество отмывки от синтетических средств “Лотос”, “Астра”,“Айна”и др.
Азопирамовая - на качество отмывки от крови.
Фенолфталеиновая проба - на ватный тампон наносят несколько капель 1%-ного спиртового раствора фенолфталеина и этим тампоном протирают испытуемый инструмент. Появление розового окрашивания указывает на некачественную отмывку от моющих средств;
Азопирамовая проба . «Азопирам» содержит 10 % амидопирин: 0,10—0,15 % солянокислый анилин, 95 % этилового спирта. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темном месте в холодильнике 2 месяца, при комнатной температуре 18—23 С0 не более месяца. Приготовление рабочего раствора: непосредственно перед проверкой качества очистки готовят рабочий раствор, смешивая равные объемы “азопирама” и 3%-ного раствора перекиси водорода. Приготовленный раствор “азопирама” наносят на кровяное пятно. Если чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 мин не появляется, то реактивом пользоваться нельзя.
Рабочим раствором обрабатывают исследуемые изделия, протирают тампонами, смоченными реактивом, различные поверхности аппаратуры и оборудования, наносят несколько капель на исследуемый предмет. В присутствии следов крови менее чем через 1 мин после контакта реактива с загрязненным участком появляется вначале фиолетовое окрашивание, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в сиреневое. Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины. Для определения скрытой крови на инструментах используется также бензидиновая проба.
Рекомендации по контролю качества предстерилизационной очистке №28-6/13 от 08.06.82 г., сведения о результатах контроля заносят в специальный журнал( из приказа МЗ СССР №408 от 12.07.89 г.).
Помимо упоминавшихся моющих средств сейчас предлагаются более дорогие современные средства для очистки медицинских инструментов Лизоформин-3000, Сайдезим, Септодор.
Методы стерилизации
Методы стерилизации: паровой; воздушный; химический; газовый
Паровой метод стерилизации применяют для изделий из коррозийностойких металлов, стекла, текстиля, резины. Стерилизацию производят насыщенным паром под избыточным давлением в паровом стерилизаторе - автоклаве.
Существуют различные типы паровых стерилизаторов (горизонтальные, вертикальные, шкафного типа).
Автоклав представляет собой котел с двойными стенками, между которыми находится водопаровая камера. В нее через воронку вливают воду. Образующийся пар проходит в стерилизационную камеру, где расположен стерилизуемый материал. Уровень воды определяют по водомерной трубе. Аппарат герметично закрывают крышкой, которую привинчивают болтами с гайками или центральным затвором. На крышке имеется манометр, стрелка которого указывает давление в аппарате. Снаружи аппарат покрыт кожухом. Под нижнюю часть аппарата подводят источник тепла для нагревания воды и образования пара. При заполнении аппарата паром давление в нем повышается и, соответственно, повышается температура. Пар проникает во все поры предмета, и содержащиеся в нем микробы погибают.
Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках (биксах), в двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента, бумаги, мешочной непропитанной бумаге, мешочной влагопрочной бумаге. Для контроля стерилизации в бикс закладывают ленту Винара, которая при достижении требуемой температуры изменяет цвет до эталона.
Металлические биксы, применяемые для стерилизации, выпускают диаметром 16 см (малые биксы), 25 см (средние биксы) и 45 см (большие биксы). Наиболее распространены круглые биксы, но существуют и квадратные. В хирургическом отделении на 70—100 коек нужно иметь не менее 10 малых, 15 средних и 25 больших биксов. Чтобы пар мог проникнуть внутрь барабана, по окружности бикса проделаны отверстия, которые открываются или закрываются перемещением металлического ободка с окнами, соответствующими группам отверстий. Герметичность бикса обеспечивает зажимающее устройство, которое плотно прижимает ободок к стенке барабана. Исправность этого устройства надо проверять каждый раз перед укладкой в барабан перевязочного материала или белья, так как при нарушении герметичности содержимое бикса может инфицироваться.
Укладка белья в биксы. Различают универсальную, видовую (специализированную) и целенаправленную укладки. Биксы вытирают изнутри и снаружи 0,5%-ным раствором нашатырного спирта, затем отодвигают на боковой стенке бикса круговую пластинку, закрывающую боковые отверстия, откидывают крышку и выстилают дно и стенки бикса холщовым мешком, салфеткой, простыней. При укладке белья и перевязочного материала следует соблюдать раз и навсегда установленный порядок - это позволяет быстро и легко найти необходимое. Аккуратно сложенное белье укладывают секторально друг за другом в вертикальном положении, чтобы можно было вынуть из бикса любую вещь, не трогая остальные. Перевязочный материал также укладывают с таким расчетом, чтобы каждую пачку или пакет можно было извлечь отдельно. Когда бикс наполнен, края выстилающей простыни заворачивают один на другой поверх содержимого. В один из биксов поверх простыни закладывают халат, а на него несколько марлевых салфеток и полотенце. Это необходимо, чтобы, вымыв руки, операционная сестра могла их вытереть и надеть стерильный халат, не открывая остального белья и материала. На крышке каждого бикса должна быть привязана клеенчатая этикетка с перечнем всего, что в нем содержится, с датой стерилизации, указанием фамилии сестры, готовившей бикс. Закрыв крышку бикса, ее укрепляют имеющимся крючком на цепочке и прочно привязывают тесьмой, чтобы она случайно не открылась. В заключение проверяют, открыты ли боковые отверстия биксов.
Укладка бикса с марлевыми салфетками: сначала укладывают большие салфетки — 6 пачек по 10 шт., затем средние салфетки — 6 пачек по 10 шт., сверху малые салфетки — 5 пачек по 20 шт.
Укладка бикса с шариками и тампонами: — сначала малые тампоны — 4 пачки по 5 шт., средние тампоны — 6 пачек по 10 шт., затем большие тампоны — 4 пачки по 10 шт., сверху марлевые шарики — 2 мешочка по 30 шт. Смешанная загрузка: халат — 1 шт., простыня — 3 шт., полотенце — 3 пары, бахилы — 14 шт.
Режимы и условия парового метода стерилизации: при температуре 132 С0 , давлении пара в стерилизационной камере 2 атмосферы в течение 20 мин рекомендуют стерилизацию для изделий из антикоррозийного материала, стекла, текстильных материалов. При температуре 120 С0 , давлении пара 1,11 атмосферы в течение 45 мин рекомендуют стерилизацию для изделий из резины и латекса, полимерных материалов. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в коробках без фильтров, равен 3 суткам, после вскрытия бикса – в течение одной смены(6 часов). В стерилизационных биксах с фильтром или упакованными в крепированную бумагу «Стерикинг»— до 20 суток.
Допускаются к работе на автоклаве только после специализированного обучения. Ремонт и монтаж автоклава производит представитель завода изготовителя или предприятий «Медтехники».
Воздушный метод стерилизации
Применим для изделий из резины силиконовой, металла, стекла. Стерилизацию проводят сухим горячим воздухом в воздушном стерилизаторе - сухожаровом шкафу. Сухожаровой шкаф представляет собой электрический шкаф круглой или прямоугольной формы. Стерилизационная камера имеет сетки или лотки для размещения подвергаемых стерилизации предметов, термометр и специальное устройство для смешивания сухого и нагретого воздуха во время стерилизации. Нужную температуру устанавливают и поддерживают с помощью термоэлектрического реле. Перед стерилизацией из шкафа полностью удаляют влажный воздух, для чего при открытой дверце включают рубильники и нагревают камеру до 80 С0 . После этого шкаф закрывают и через 10—15 мин температура достигает требуемой. Стерилизацию проводят в упаковке из бумаги непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной или без упаковки в открытых емкостях.
Режимы стерилизации: при температуре 180 С0 в течение 60 мин для изделий из металла; при температуре 160 С0 в течение 150 мин. Для дезинфекции достаточно 45 мин. при температуре 1200С. Инструменты, стерилизуемые без упаковки, должны быть использованы в течение рабочей смены, в пакетах срок хранения 3 суток. Хирургические инструменты целесообразно, также, хранить в специальных камерах с использованием УФО « аппарат Панмед» что является альтернативой общепринятой укладке инструментов на столе с использованием простыней. Стерильность невостребованного инструмента здесь сохраняется в течение 7 суток.
Химический способ стерилизации.
Применяют для изделий из полимерных материалов, резины, стекла, коррозийностойких металлов - этот способ еще называют холодной стерилизацией. Состав предлагаемых препаратов здесь самый многочисленный, но следует помнить о том, что все предлагаемые препараты должны сопровождаться сертификатами соответствия ГОСТ РФ. В зависимости от химической структуры средства, использующиеся для асептики, делятся на следующие группы:
· Спирты
· Галоидные препараты
· Кислородосодержащие
· Альдегиды глутаровые
· Четвертичные аммониевые соединения
· Препараты надуксусной кислоты
· Фенолсодержащие
· Гуаниды
· Красители
· Композиционные препараты
Остановимся лишь на характеристике некоторых из них. Этиловый спирт 70% и 96% используется для дезинфекции рук медперсонала, операционного и инъекционного поля, стерилизации хирургических инструментов (особенно режущих) стерилизации и хранения шовного материала. Йодсодержащие(галоидные) препараты: 3% и 5% спиртовые растворы используются для обработки операционного поля, однако, на них может возникнуть аллергическая реакция, поэтому сейчас их заменили йодонатом(4,5% свободного йода). Кислородсодержащие соединения - в настоящее время в качестве рабочих растворов используют 6%-ный раствор перекиси водорода. Стерилизацию проводят в закрытых емкостях из пластмассы или покрытых эмалью. Эмалевое покрытие должно быть без повреждений.
Режимы стерилизации: раствор 6%-ной перекиси водорода при температуре не менее 18 С0 - 360 мин, при температуре 50 С0 — 180 мин. Стерилизацию проводят при полном погружении изделия, после чего инструмент следует промыть стерильной дистиллированной водой. С представителями группы красителей знаком каждый. Это 1% и 2% спиртовые растворы «Бриллиантового зеленого» и «Метиленовая синь». Из глутаровых альдегидов чаще используются «Сайдекс» и «Виркон». Они предназначены для стерилизации медицинских инструментов требующих особо осторожного обращения и чувствительных к нагреванию, включая жесткие и гибкие эндоскопы. Проявляют бактерицидные, вирусоцидные, спороцидные и фунгицидные свойства. Время экспозиции в 1% «Вирконе» эндоскопа 10 минут, при туберкулезе – 20 минут. Препараты надуксусной кислоты «Дезоксон-1», 1% раствор при экспозиции 45 минут высокобактерициден, спороциден, разрушает вирусы и грибы. Представляющий гуаниды «Хлоргексидин биглюконат» в виде 0,5% спиртового раствора широко применяется для обработки рук, операционного поля, хирургического инструментария.
Техника безопасности при работе с дезинфектантами, оказание первой помощи.
Определена приказом МЗ РСФСР № 215 от 14.03.1979 г. Меры предосторожности при работе с такими препаратами включают инструктаж, периодические медицинские осмотры медперсонала, строгое соблюдение правил приготовления растворов, их расфасовка, хранение. К работе с дезинфицирующими средствами допускаются лица не моложе 18 лет, не страдающие повышенной чувствительностью к химическим веществам. Запасы дезинфицирующих препаратов следует хранить под замком и отдельно от лекарственных препаратов. Расфасовку и приготовление растворов проводят в вытяжном шкафу или отдельном проветриваемом помещении в резиновых перчатках, герметичных очках, в маске или респираторе. При попадании дезинфектантов на незащищенную кожу необходимо немедленно обмыть пораженное место водой, при поражении формальдегидом – 5% раствором нашатырного спирта. Во всех случаях показан прием теплого молока с питьевой содой. При попадании любого препарата в глаза немедленно промыть их струей воды или 2% раствором питьевой соды. При раздражении глаз, в глаз закапать раствор альбуцида, при болях – новокаин.
Газовый метод стерилизации
Применяют для обеззараживания оптики, кардиостимуляторов, стекла, металла, изделий из полимерных материалов. Стерилизацию проводят в стационарных газовых стерилизаторах. Эффективным средством является окись этилена (экспозиция 16 часов), смесь окиси этилена и бромистого метана (экспозиция 6 часов). Стерилизацию проводят в упаковке из двух слоев полиэтиленовой пленки толщиной 0,06—0,2 мм, пергамента, бумаги мешочной влагопрочной. Срок хранения изделий, простерилизованных в полиэтиленовой упаковке, до 5 лет, в крафт-бумаге — 20 суток.
Применяют, также, стерилизацию парами 16%-ного формалина в пароформалиновых камерах, экспозиция 90 минут при температуре 400С. Используется для стерилизации изделий из резины, полимерных материалов, стекла. Условия проведения стерилизации и сроки сохранения стерильности идентичны стерилизации смесью бромистого метана и окисью этилена.
Контроль стерильности.
Существует 3 способа контроля стерильности инструментов и операционной:
а) Физический (термический), используется при паровом методе стерилизации. Основан на свойстве ряда веществ менять цвет или плавиться при воздействии определенной температуры. Так плавление серы происходит при 110 - 1200С, резорцина 110-119 0С, мочевины 1320С. Берется пробирка, куда насыпают вещество,
и пробирка закладывается вместе со стерилизуемым материалом.
Недостаток этого способа контроля состоит в том, что мы видим, что
порошок в пробирке расплавился и значит необходимая температура для стерилизации достигнута, но мы не можем быть уверены, что она была такой на протяжении всего времени экспозиции.
б) Химический контроль, также применяется при автоклавировании. Берут фильтровальную бумагу, помещают ее в раствор крахмала, после чего погружают в раствор Люголя. Она приобретает
темно-бурый цвет. После экспозиции в автоклаве крахмал при температуре
свыше 120 градусов разрушается, бумажка обесцвечивается. Метод имеет тот
же недостаток что и физический.
Используются также индикаторы стерильности (ИС-120, ИС-132 и др.) научно-производственной фирмы «Винар» представляющие полоски бумаги с индикаторным слоем. При достижении определенной температуры их цвет должен совпадать с эталоном.
в) Биологический контроль: это метод самый надежный и универсальный, для проверки стерильности инструментов, выявления носителей инфекций, определения чувствительности микрофлоры к антибиотикам и др. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные среды. Нет роста микробов - значит все в порядке, есть рост микробов - значит необходимо повторно провести стерилизацию инструментов. Недостаток метода в том, что ответ мы
получаем только спустя 48 часов, а материал
используются еще до получения ответа из бактериологической лаборатории.
Дата добавления: 2018-04-15; просмотров: 1240; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!