ГЛУБОКОЕ ЗАМОРАЖИВАНИЕ СПЕРМЫ 7 страница



Для регулирования гидростатического давления в меж­стенном пространстве вагины в момент эякуляции в стен­ке входного края ее цилиндра имеются отверстия разного диаметра, которые позволяют перейти избыточному объ­ему воды или воздуха из внутренней полости в наружную.

Искусственные вагины для взятия спермы у произво­дителей готовят за ночь до использования в такой после­довательности: тщательно вымытую и высушенную рези­новую камеру длиной 60 см (7) вкладывают в цилиндр 4 длиной 30 см, натягивают ее отвернутые концы на наруж­ную поверхность цилиндра и крепят к нему резиновыми кольцами (5) рядом с патрубком (б). При этом со стороны входа в вагину образуется дополнительное наружное меж­стенное пространство (J), сообщающееся с внутренним посредством отверстий (2) в цилиндре через которые осу­ществляется свободный переход воды и воздуха из одной камеры в другую (рис. 15).

На противоположный от входного отверстия конец вагины надевают спермоприемник одноразового использо­вания (6) и крепят с помощью прижимных резиновых ко­лец (5). Используемый спермоприемник представляет со­бой коническую емкость, заканчивающуюся цилиндри­ческой чехол-пробиркой (II), внутри которой находится отрезок трубчатой муфты (9), соединенный с ней двумя сварными швами (10). Изготовлен спермоприемник из полимерной пленки толщиной 120+20 микрон путем тер­мической сварки по контуру.

Прикрепленный к вагине спермоприемник вкладывают внутрь ее корпуса, после чего зачехляют оба конца перга­ментной бумагой и закрепляют кольцами из камеры. Подготовленные таким образом вагины автоклавир уют при избыточном давлении 0,25 атмосферы (105 °С) в течение 20 минут.

После автоклавирования со стороны, где закреплен спермоприемник, с вагины снимают защитный бумажный чехол, в межстенное пространство вливают 150 мл воды, а спермоприемник расправляют, что необходимо для испа­рения конденсата. В таком виде прибор помещают в тер­мостат при температуре 40...42 °С, где и хранят до момента использования, обычно до утра.

56

Стеклянную посуду (флаконы, колбы, цилиндры и пр.) скрывают ватно-марлевыми пробками и стерилизуют пу-гм автоклавирования при 1,5 атм. в течение 30 минут. Ложно стерилизовать ее также в сушильных шкафах при температуре 105 °С в течение 1 часа. Металлические ин­струменты кипятят в дистиллированной воде не менее 30 минут. Халаты, косынки, шапочки, полотенца, вату стери­лизуют в автоклаве или гладят горячим утюгом перед их использованием. Изделия из полимерной пленки облучают ультрафиолетовыми лучами в течение 20 минут лампой ПРК-2 или БУВ-30...60 при расстоянии источника излуче­ния от объекта 15...20 см.

При закупке новой партии резиновых камер последние необходимо проверить на отсутствие токсичности резины, из которой они изготовлены. Для этого резину нарезают мелкими кусочками и после тщательной мойки добавляют к свежеразбавленной сперме в количестве около 5 %, за­тем сперму проверяют на выживаемость при 38 °С. Кон­тролем служит сперма без кусочков резины. Показатели выживаемости в опыте и контроле не должны иметь до­стоверной разницы.

ВЗЯТИЕ СПЕРМЫ У БЫКОВ

Взятие спермы является одним из основных техноло­гических процессов искусственного осеменения. От пра­вильности организации работы на этом этапе зависит эф­фективность дальнейшей деятельности предприятия.

Оператор по отбору эякулятов от быков должен быть не только хорошо натренированным специалистом, но и иметь достаточное представление об анатомо-физиологи-ческих процессах, протекающих в организме самца во время полового акта. При взятии спермы он должен рабо­тать в чистом халате и спецодежде. Перед взятием каждого эякулята дезинфицирует руки спиртом-ректификатом или пользуется одноразовыми полиэтиленовыми перчатками, обработанными ультрафиолетовыми лучами.

Непосредственно перед использованием в межстенное пространство искусственной вагины нагнетают воздух, контролируя степень наполнения через стенку спермопри-емника, снимают защитный чехол и смазывают стериль­ным разбавителем просвет входного отверстия вагины.

Для этого в описанный спермоприемник наливают сте­рильный желточно-цитратный разбавитель (без глицерина) и герметизируют. Свободный конец трубки с зажимом вводят в просвет искусственной вагины и орошают

57

входное отверстие двумя-тремя миллилитрами стерильного желточно-цитратного разбавителя (рис. 16).

Приготовленную искусственную вагину из термостата (t = .42±1 °С) передают через шлюз в манеж технику, кото­рый зачехляет спермоприемник утепленным чехлом. При низкой температуре на внутренней поверхности спермо-приемника иногда оседают капельки конденсата, попа­дающего в сперму после эякуляции, что может вызвать гипотонический шок спермиев. Поэтому температура в манеже должна быть 18...20 °С.

Перед взятием спермы быка стимулируют путем сдер­живания в течение 1...1,5 минут или предоставления од­ной-двух холостых садок на чучело.

Во время садки быка на механическое чучело техник направляет конец полового члена производителя в ис­кусственную вагину под углом ^ 45°.

После выделения производителем спермы искусствен­ную вагину ориентируют в горизонтальное положение и герметизируют взятый эякулят в спермоприемнике по ли­нии 8 (см. рис. 15) путем термической сварки с помощью прибора "Молния" (рис. 17) или специального устройства для герметизации спермо- и эмбриоприемников (рис. 18).

Затем по метке 7 (см. рис. 15) спермоприемник с эяку­лятом отрезают, прикрепляют к нему этикетку и передают через специальный шлюз в лабораторию, а использован­ную вагину помещают в ванну с подогретым до температу­ры 40...60 °С 3 % раствором кальцинированной соды. Спустя один-два часа вагину тщательно моют, пропола­скивают проточной теплой водой, затем — дистиллиро­ванной, монтируют, стерилизуют, как указано выше, и помещают в термостат с температурой 42 °С.

ПЕРВИЧНАЯ ОЦЕНКА КАЧЕСТВА СПЕРМЫ

К лабораторным помещениям для работы со спермой предъявляются повышенные требования по освещенности, кондиционированию воздуха при температуре 20 °С и от­носительной влажности — 80 %, а также по гигиене. Не­обходимо следить, чтобы в процессе технологической об­работки сперма нигде не контактировала с окружающими предметами. За два-три часа до начала работы помещение лаборатории облучают с помощью бактерицидных ламп. Такое время необходимо для того, чтобы выветрились ток­сические продукты, образующиеся в воздухе помещения после его облучения ультрафиолетовыми лучами.

58

Каждый эякулят оценивают органолептически, визу­ально. Наличие в сперме крови, мочи, хлопьев гноя ука­зывает на патологические процессы в системе органов размножения. Такая сперма к использованию не допуска­ется.

Поступивший в лабораторию эякулят взвешивают на весах марки ВЛКТ-500 или Р-2-200 (рис. 19), которые снабжены механизмом компенсации тары. Перед началом работы на весы кладут эталонный пустой спермоприем­ник, отрезанный по метке 7 (см. рис. 15). Рукояткой меха­низма компенсации тары устанавливают нулевое деление шкалы. После этого взвешивают чистую массу эякулята (принимается, что 1 мл спермы весит 1 г). Если сперму разбавляют по таблицам, показания массы снимают с точ­ностью до 0,1 г, если степень разбавления определяют с помощью программируемого микрокалькулятора, с точ­ностью до 0,01 г.

Такой способ определения массы эякулята позволяет полностью избежать микробной контаминации и отличает­ся наиболее высокой точностью.

Для определения активности и концентрации пробу спермы отбирают в чехол-пробирку, которая является концевой частью спермоприемника. При отборе проб стенки спермоприемника слегка сдавливают левой рукой, а большим и указательным пальцами правой сжимают один-два раза концевую часть чехол-пробирки, заполняя ее спермой. Чехол-пробирку с пробой спермы с помощью специальных стерильных ножниц (рис. 20) отделяют от спермоприемника на уровне второго сварного шва (см. рис. 15). При этом должен оставаться нетронутым внут­ренний наконечник, а чехол-пробирка иметь жесткое кольцо. После отделения чехол-пробирки наружную по­верхность наконечника обрабатывают 96-градусным спир­том и зачехляют стерильным отрезком полиэтиленовой трубки, запаянной с одного конца. Затем спермоприемник с эякулятом фиксируют в прорезях специального штатива (рис. 21). Таким образом, при отборе пробы эякулят оста­ется интактным.

Во входное отверстие чехол-пробирки в горизонталь­ном положении плотно вставляют заточенный на конус конец микропипетки и путем сдавливания пальцами сте­нок пробирки набирают 0,05 мл спермы для определения концентрации. На многих предприятиях микропипетки монтируются с резиновыми шлангами и ватными филь­трами, через которые насасывают ртом сперму в микропи-петку. При использовании Харьковской технологии эта

59

Установка включает простой микроскоп с темнополъ-ным конденсором, термостатирующий столик и фотоаппа­рат или фотонасадку. Наблюдаемая картинка может экс­понироваться прямо на экран.

Этот метод и устройство рассмотрены и одобрены как стандарт для определения абсолютного количества живых спермиев в дозе замороженной спермы при международ­ном обмене.

М. Адам, А. Хамелин, Р. Берж и М. Гоффо (1969) предложили метод и прибор для исследования жизнеспо­собности спермы путем регистрации диффузии когерент­ного излучения лазера, который позволяет довольно под­робно охарактеризовать эякулят по концентрации, по­движности спермиев и другим параметрам.

А.А, Бегма и соавторы (1991), идя по этому пути, соз­дали лазерно-компьютерный анализатор для оценки ка­чества спермы (ЛКАОКС), представляющий собой доп-плеровский корреляционный спектрометр, основанный на регистрации рассеянного на спермиях лазерного света, анализируемого коррелятором, строящим функцию рассе­янного света, содержащего информацию о скоростях, час­тоте вращения и доле подвижных клеток. При этом распе­чатываются сведения о средней скорости движения спермиев в эякуляте, частоте вращения, энергии популя­ции спермиев и их концентрации. Однако все эти методы позволяют получить лишь видимые фотограмметрические характеристики спермы, которые сильно зависят от мно­гих факторов (температуры, рН, солевого состава среды и др.), что существенно искажает истину и усложняет при­борную часть. Кроме того, принцип анализа микроскопи­ческой картинки суспензии спермиев не несет достаточ­ной информации о внутренней структуре клеток, устойчи­вости к повреждающим факторам и оплодотворяемости.

В связи с этим многие авторы настойчиво ведут поиски более информативных методов оценки спермы.

В частности, нами (Осташко, Катков 1982; 1984; 1985) установлена тесная зависимость (г = 0,872 при Р<0,001) между электромеханической прочностью мембранного ап­парата спермиев и их криорезистентностью. На основе этого факта разработан метод прогнозирования пригод­ности эякулятов к замораживанию путем предварительного их испытания на устойчивость к пробою мембраны им­пульсным электрическим полем высокой напряженности (ИЭПВН).

Отобранные по этому показателю эякуляты даже с низкой активностью оказались криорезистентными и со-

Обозначения: А,,, Д,, А, — активность свежей, замороженно-оттаянной и обработанной ИЭПВН спермы (баллов).

хранили высокую оплодотворяемость (табл. 14). В то же время некоторые эякуляты с хорошей подвижностью спермиев при наблюдении под микроскопом имели низ­кую криорезистентность и низкую устойчивость к воздей­ствию ИЭПВН.

Для получения более глубоких характеристик морфоло­гического состояния клеточной структуры с успехом может быть применена интерференционная микроскопия. В ши-ринг-системе (например, микроскоп МП1-5 польского производства) за счет введения двоякопреломляющей призмы Волластона и скрещенных поляризатора и анали­затора изображения объектов раздваиваются и разница в яркости каждого из двух изображений зависит от концент­рации веществ в клетке и ее толщины (рис. 23). Благодаря изложенному, интерференционный микроскоп позволяет определять количество сухой массы, показатель преломле­ния, толщину клетки и концентрацию вещества в клетке. На этом принципе нами (Васильев и др., 1975) разработан дифференциальный метод определения сухой массы, ко­личества ДНК и белков в головках спермиев на мазках спермы. При этом установлено, что наивысшую оплодо­творяющую способность спермы имели быки, у которых сухая масса головок спермиев находилась в пределах 8,49-8,82 пг, количество ДНК-2,7...2,9 пг, а отношение ДНК/белок — 0,46...0,52. У быков с меньшими или боль-

62

шими значениями этих величин оплодотворяющая спо­собность спермы снижалась. Таким образом, разработан метод, позволяющий вести селекцию быков по прогнози­руемой оплодотворяемости их спермы на

Таблица 14. Физиологические показатели некоторых эякулятов с низкой на­чальной активностью

№ садки

Физиологические

показатели

Оплодотворясмость

АС Аз Ае Осеменено голов Стельных после 1 осеменения % Р
1 2 3 4 5 6 7 8 1* 2** 1** 3** 2* 3* 2* 3**

8

5

6

8

8

5,5

8

6

 

8,0

5,6

4

3,5

4

4,5

4

3,5

4

4

 

4,1

3,8

4

4

4

4,5

4

4

4,5

4

 

4,3

4,0

52

46

106

140

127

119

120

144

 

439

415

36

32

72

94

78

74

70

88

 

287

261

69,2

69,6

67,9

61,1

61,4

62,2

58,3

57,6

 

63,3

62,9

>0,1

 

>0,1

 

>0,1

 

>0,1

 

>0,1

В целом

* - контроль

** - опыт

 

основе объек­тивных показателей.

В настоящее время нами разрабатывается компьютер­ный метод и устройство для всесторонней оценки качества эякулятов с прогнозированием криорезистентности и оплодотворяемости. В него заложен принцип дифферен­циального анализа различных сведений об эякуляте (концентрация спермиев, активность, скорость движения, интенсивность вращения, криорезистентность спермиев и др.) и получение интегрального показателя, коррелирую­щего с оплодотворяемостью.

При отборе пригодных для замораживания эякулятов обязательно учитываются данные оценки быка на его пло­довитость. Целью первичной оценки спермы является, прежде всего, недопущение к производству низкокаче­ственных эякулятов, сперма от которых попадая в хо­зяйства, может стать причиной ухудшения воспроизвод­ства стада и больших экономических потерь. Всегда надо помнить, что эффективность искусственного осеменения не в количестве проданных племенными предприятиями спермодоз, а в степени улучшения воспроизводства в ста­дах и темпах увеличения продуктивности животных за счет проводимой племенными предприятиями селекционной работы.

ТЕХНОЛОГИЯ РАЗБАВЛЕНИЯ СПЕРМЫ

История разработки оптимальных композиций сред для разбавления клеточных суспензий с целью их криоконсер-вации включает ряд периодов, которые отражают динами­ку уровня теоретических достижений в области криобио­логии.

Первые работы в этом направлении (Максимов, 1913; Бернштейн, Петропавловский, 1937; Rostand, 1946; Соко­ловская, 1947; Смирнов, 1949; Polge, Smith, Parkes, 1949) были посвящены открытию способности живой материи сохранять жизнеспособность в замороженном состоянии. При этом были открыты разные криопротекторы как про­никающие в клетку (глицерин и полиолы), так и не про­никающие (различные сахара и полимеры). Затем следует период подробного изучения механизмов криоповрежде-ния и криопротекции клеток и разработки технологий за­мораживания и длительного хранения клеточных суспен-

63

зий (спермы, крови, различных растительных и животных тканей и органов). Эти методики отличались созданием очень сложных композиций криопротекторных сред, за­мысловатых графиков снижения температуры и громоз­дких установок, приборов и аппаратов с электронным и даже компьютерным управлением (Adler, 1960; 1961; Bratton, Foote, Cruthers 1955; Erikson, Graham, 1959; Hafs Elliott, 1955; Jondet, 1964; 1968; Polge, Rowson, 1952; Ostashko, 1964; Sullivan, Mixner, 1963; Willett, Ohms, 1958 и многие другие).

Положение существенно упростилось после работ Н. Nagase, E.F. Graham, Т. Niwa (1964), Н. Nagase, Т. Niwa, S. Yama-shita, S. Irie (1964), которые доказали, что комбинация проникающих (глицерин) и непроникающих (лактоза, са­хароза, рафиноза) криопротекторов позволяет существенно упростить применяемые среды и методику замораживания спермы и отказаться от сложной аппаратуры.

Был разработан метод замораживания спермы в откры­тых гранулах с использованием 7 % глицерина на 11 % растворе лактозы и 30 % желтка, который имел большой успех и широко применялся в животноводстве многих стран. Он не используется только из ветеринарных и сани­тарно-гигиенических соображений. Однако принципиаль­ные его особенности стали основой для создания совре­менных технологий криоконсервирования и длительного хранения спермы производителей различных видов живот­ных и птиц.

Эти достижения были использованы при разработке сред для Харьковской технологии обработки спермы, ко­торая описана ниже.

При работе по этой технологии используют свежевзя­тую сперму с активностью не ниже 7,0 баллов (70 % ак­тивных спермиев) из отобранных по интегральному пока­зателю эякулятов, полученных от быков с плодовитостью не менее 50 %.

В качестве разбавителей используют среды № 1 и № 2 по рецептам:

Среда № 1

Раствор лактозы (11 %-ный С12Н22О11Н2О) или сахарозы (С12Н22О11), мл                                        63,0

Желток куриного яйца, мл                                                                                                                             30,0

Глицерин (С3Н3О3), мл                                                                                                                                     7,0

Среда № 2

Лактоза С12Н22О11Н2О или сахароза С12Н22О11, г                                                                                     6,0

Натрий лимоннокислый, трехзамещенный, пятиводный Na3C6H5O7x5,5 H2O, г                                 1,4

Глицерин С3Н3О3, мл                                                                                                                        5,0

Вода дистиллированная, мл                                                                                                                    100,0

 

Яйца должны быть из хозяйств, благополучных по за­разным заболеваниям, от здоровой с хорошим витамин­ным питанием птицы, диетические. Это требование в на­ше время выполнить очень трудно, ибо не просто отыс­кать хозяйство, благополучное по туберкулезу и салъмо-неллезу птиц. Особую опасность представляет наличие в желтке возбудителя туберкулеза птиц, который при ис­кусственном осеменении попадает в матку животных Хотя микобактерии туберкулеза птичьего вида (Mycobacterium tuberculosis avium) и не вызывают у рогатого скота клини­ческой формы туберкулеза, они являются активным аллер­геном, могут размножаться и сенсибилизировать организм животного, вызывая устойчивую аллергическую настроен­ность. Это может быть причиной появления в стадах ал­лергических реакций при очередных туберкулинизациях и снижения эффективности ветеринарных профилактиче­ских мероприятий. Все препараты должны быть безвред­ными для спермиев, не иметь примесей токсичных ве­ществ, запаха. Хранят их в герметически закрытых ем­костях с этикеткой, обозначающей предприятие, выпус­тившее препарат, название и степень чистоты: чда — чис­тый для анализа или хч — химически чистый. Используе­мые ингредиенты должны отвечать требованиям Государ­ственной фармакопеи и ГОСТам, быть проверенными на безвредность для спермиев.


Дата добавления: 2018-11-24; просмотров: 253; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:






Мы поможем в написании ваших работ!