Диагностика норовирусной инфекции

⇐ ПредыдущаяСтр 6 из 6

Первичная клиническая диагностика НВГЭ может быть проведена на основе разработанного для анализа вспышек гастроэнтерита в 1982 г. критерия Каплана, который включает в себя отрицательный анализ на бактериальные патогены, наличие рвоты у больных (в > 50% случаев), инкубационный период 24-48 ч, среднюю продолжительность заболевания – 12-60 ч [110]. В дальнейшем при сопоставлении с результатами лабораторной диагностики было показано, что чувствительность критерия Каплана при расшифровке вспышек НВГЭ составляет 68%, а специфичность – 99% [201].

Лабораторную диагностику норовирусной инфекции проводят с использованием морфологических, иммунологических и генетических методов.

Электронная микроскопия.

Первоначально для детекции норовирусов использовали прямую электронную микроскопию. Детекция кишечных вирусов в образцах стула с использованием прямой ЭМ требует концентрации вирусов, по крайней мере, 10⁶на 1 мл фекалий [61]. Однако вирионы норовирусов присутствуют в фекалиях в более низких концентрациях и не имеют ярко выраженной морфологии [108]. Это делает затруднительным применение прямой микроскопии для выявления норовирусов. Более эффективно использование ЭМ в отношении саповирусов, обладающих характерной морфологией. Специфичность и чувствительность метода повышается при использовании иммуноэлектронной микроскопии [165, 208].

Иммуноферментный анализ.

Калицивирусы человека практически не способны культивироваться в клеточных культурах и пассироваться на лабораторных животных [62]. Разрабатываемые экспериментальные методы культивирования норовирусов пока не дают возможность получать вирус в больших количествах [188]. В связи с этим в качестве источника антигенов для разработки иммунологических методов, таких как радиоиммунный анализ, блокирующий радиоиммунный анализ, иммуноферментный анализ, иммунная адгезия, ранее использовали материалы, полученные от больных или экспериментально инфицированных добровольцев [24].

Успешное клонирование генома вируса Narwolk привело к развитию новых методов и получению новых реагентов для диагностики инфекций, вызванных калицивирусами человека [98, 101]. Путем экспрессии капсидного белка вируса Norwalk в бакуловирусной системе были получены ВПЧ, морфологически и антигенно подобные нативным вирионам [77, 100]. ВПЧ были использованы при иммунизации животных для получения иммунных сывороток, поликлональных и моноклональных антител, на базе которых были разработаны различные варианты иммуноферментных диагностических тест-систем (иммуноферментный анализ с гипериммунной сывороткой животных, иммуноферментный анализ с моноклональными антителами, иммуноферментный анализ с ВПЧ) [24]. В России используют тест-систему Ridascreen Norovirus для ИФА (Германия).

В настоящее время в Японии разработаны коммерческие иммунохроматографические наборы для диагностики норовирусной инфекции, не уступающие по чувствительности и специфичности имеющимся тест-системам для ИФА [157].

Полимеразная цепная реакция.

Определение последовательности генома вируса Norwalk стимулировало развитие методов детекции вирусной нуклеиновой кислоты. Были сконструированы праймеры, соответствующие наиболее консервативной области генома – региону RdRp, позволившие апмлифицировать, а затем секвенировать нуклеотидные последовательности других норовирусов, а также саповирусов. Были разработаны метод молекулярной гибридизации, и более чувствительный метод обратной транскрипции/полимеразной цепной реакции (ОТ-ПЦР) [21].

Первый ОТ-ПЦР анализ для калицивирусов был описан через два года после сообщения об успешном клонировании генома вируса Norwalk, в 1992 г. [58, 99]. С тех пор этот анализ стал одним из основных средств диагностики калицивирусных инфекций человека. Важным преимуществом ОТ-ПЦР анализа является его применимость к исследованию образцов окружающей среды. Чувствительность и специфичность ОТ-ПЦР зависят от способа очистки вирусной нуклеиновой кислоты, праймеров, используемых для амплификации, метода интерпретации результатов теста. Ключевым моментом является выбор праймеров, способность которых выявлять те или иные штаммы норовирусов и саповирусов определяется их последовательностью, количеством вируса, присутствующего в образце для исследования, и температурой, используемой для отжига олигонуклеотидов в ходе процесса амплификации [24].

Генетическое разнообразие норо- и саповирусов делает затруднительным выбор единственной пары праймеров с адекватной чувствительностью и специфичностью для детекции всех калицивирусов человека. Даже среди представителей норовирусов отмечают низкую гомологию нуклеотидных последовательностей отдельных генов – 36% по гену хеликазы и 53-64% по гену полимеразы [146, 207, 209]. В настоящее время предложено множество диагностических праймеров, позволяющих идентифицировать норовирусы геногрупп I, II и саповирусы. Большинство из них фланкируют участки, кодирующие ген полимеразы, который характеризуется меньшей вариабельностью по сравнению с другими участками генома [21, 32, 75, 102, 126, 143, 152, 209]. Ando T. и соавт. в 1995 г. предложили мультиплексный подход, в котором для синтеза кДНК используется один праймер (SR33), а в процессе амплификации принимают участие четыре праймера: три (SR48, SR50, SR52) – для амплификации фрагментов кДНК норовирусов геногруппы I и один (SR46) – для норовирусов геногруппы II [21]. Jiang X. и соавт. в 1999 г. разработали универсальную пару праймеров Р280/Р290, которая амплифицирует фрагменты кДНК норовирусов геногрупп I, II и саповирусов [102]. Другим регионом, обладающим консервативностью, является участок генома, кодирующий N/S домен белка VP1 [78, 105, 144, 209].

Анализы с использованием праймеров для амплификации неполимеразных регионов генома из-за узкой специфичности и генетического разнообразия норовирусов позволяют выявлять лишь небольшое число штаммов вируса [24].

Для повышения чувствительности обнаружения норовирусов в 10-1000 раз используют «гнездовую» или «полугнездовую» ПЦР [76]. Однако главный недостаток этого подхода – увеличение возможности перекрестной контаминации образцов [24]. Избежать этого недостатка позволяет постановка ПЦР с детекцией в режиме реального времени («реал-тайм»-ПЦР). Разработаны методики «реал-тайм»-ПЦР для выявления норовирусов I-й и II-й геногрупп [105, 116].

В целом, в настоящее время диагностические подходы для обнаружения норовирусов не стандартизированы. В университете Торонто (Канада) была проведена сравнительная оценка чувствительности и специфичности трех методических подходов, используемых в настоящее время для диагностики норовирусной инфекции. При исследовании 189 образцов, полученных во время вспышек ОГЭ в Онтарио в 2006-2007 гг., показано, что чувствительность ПЦР с детекцией в режиме реального времени, ИФА и ЭМ составила 100%, 86%, и 17% соответственно, а специфичность - 84%, 92% и 100%. Таким образом, наибольшей чувствительностью обладает ПЦР, а наивысшей специфичностью – электронная микроскопия. ИФА по обоим показателям занимает промежуточное положение. На основании полученных характеристик оценивалось оптимальное количество образцов, которое необходимо исследовать из каждой вспышки, чтобы подтвердить ее норовирусную этиологию. При использовании ЭМ необходимо не менее 7-12 образцов, при использовании ПЦР и ИФА – не более пяти, так как при увеличении количества исследуемых образцов увеличивается и вероятность получения ложно-положительных результатов. То есть, установка «чем больше – тем лучше» верна только в отношении электронной микроскопии [67] .

Секвенирование участков генома норовирусов.

Определение нуклеотидных последовательностей отдельных участков генома норовирусов и последующий филогенетический анализ способствуют решению конкретных эпидемиологических задач. Сравнение участков гена РНК-зависимой РНК-полимеразы и N/S-домена позволяет определить принадлежность норовируса к той или иной геногруппе, генотипу или геноварианту, в частности, зафиксировать появление в популяции нового эпидемического варианта. Появление нового геноварианта генотипа GII.4 в последние годы коррелировало с ростом заболеваемости норовирусным гастроэнтеритоми, и, вероятно, может в дальнейшем служить прогностическим признаком осложнения эпидситуации по норовирусной инфекции. Так, исследование летних вспышек на круизных кораблях позволило предсказать зимний подъем заболеваемости в Европе в 2006 г. [206].

Эпидемиологическим маркером при расследовании вспышек и установлении взаимосвязей в очагах инфекции является анализ наиболее вариабельного участка генома норовирусов, кодирующего субдомен P2. Показана 100%-ная идентичность данного участка у норовирусов, выделенных в ходе одной вспышки. Анализ этого штаммоспецифичного участка является инструментом для отслеживания передачи вируса, оценки единства или множественности источников инфекции [216].

В последние годы для поиска новых вирусов используется так называемый метагеномный анализ или крупномасштабное секвенирование. Суть его состоит в тотальном выделении из исследуемых проб нуклеиновых кислот, определении их первичных последовательностей и сравнении с имеющимися мировыми генетическими базами данных. Сходный подход – однопраймерная независимая от последовательности амплификация (a single-primer sequence-independent amplification - SP-SIA) – использован для анализа материалов из вспышек, в которых не было ранее обнаружено каких-либо инфекционных агентов. С помощью SP-SIA вирусы были обнаружены в 5 из 51 ранее нерасшифрованной вспышки, причем в четырех из них выявлены норовирусы, не детектируемые с помощью других диагностических методов [37].

В России обнаружение калицивирусов проводят с использованием ЭМ [13, 16], ИФА [3, 7], ОТ-ПЦР [2, 4, 5, 9, 10, 11, 12, 14, 15]. После разработки коммерческих тест-систем для идентификации норовирусов геногрупп I и II методом ОТ-ПЦР с детекцией продуктов амплификации методом электрофореза и в формате «мультипрайм» с детекцией продуктов амплификации по флуоресцентной метке (ЦНИИЭ, г. Москва), генодиагностика норовирусной инфекции стала доступна практическому здравоохранению России.

Исследование объектов внешней среды.

Boxman I.L. и соавт. (2009) оценили информативность исследования смывов с объектов внешней среды при установлении этиологии вспышек ОКИ в ресторанах и на круизных кораблях. Вспышки были отобраны на основании клинических симптомов, соответствующих вирусному гастроэнтериту, а также времени между употреблением предположительно контаминированной пищи и появлением клинических симптомов (более 12 часов). С помощью ОТ-ПЦР норовирусная РНК была обнаружена в 51 из 86 (59%) клинических образцов в 12 из 14 вспышек (86%), в 13 из 90 (14%) проб пищи в 4-х из 18 вспышек (22%), и в 48 из 119 (40%) смывов, взятых в 14 из 27 вспышек (52%). Положительные смывы соответствовали положительным пробам пищи в семи вспышках (были выявлены идентичные последовательности). Кроме того, норовирусы были обнаружены на поверхностях в кухнях и ванных комнатах в пяти вспышках, при которых не было возможности исследовать клинические образцы, а также в двух вспышках, где материал от больных был отрицателен на наличие норовирусов. Следовательно, исследование смывов с поверхностей может быть информативным инструментом в дополнение к исследованию образцов пищи и материала от больных, особенно, в тех случаях, когда вирусная РНК обнаруживается на поверхностях, используемых для приготовления пищи [36].

При исследовании больших объемов воды для обнаружения вирусов в воде открытых водоемов возникает задача концентрирования вируса. Для этих целей предлагается использование установок для ультрафильтрации воды и последующее выявление РНК норовируса с помощью полугнездовой ПЦР [90].

Для концентрирования кишечных вирусов используют фильтры 1MDC, которые являются дорогостоящими для рутинного вирусного мониторинга. В качестве альтернативы для исследования больших объемов водопроводной воды в США разработаны экономичные картриджи NanoCeram, позволяющие эффективно концентрировать и выявлять норовирусы и энтеровирусы. В среднем в эксперименте при контаминации вирусами 100 л водопроводной или речной воды эффективность адсорбции вирусов на этих фильтрах составила 84%, а эффективность последующей элюции – 77% [111].

Большое значение для оценки эпидемической ситуации имеет информация о загрязненности вирусами прибрежных вод. Проведены успешные эксперименты по концентрированию вирусов из морской воды с помощью биоаккумуляторов – двустворчатых моллюсков Isognomon sp. Норовирусы и энтеровирусы были выявлены с помощью ПЦР после фильтрации этими моллюсками морской воды, экспериментально контаминированной сточными водами или образцами фекалий, содержащими норовирус человека [23].

Суммируя вышесказанное можно заключить, что к настоящему времени накоплены обширные знания о структурной и молекулярной организации норовирусов, их генетическом разнообразии и особенностях циркуляции геновариантов; показана ведущая роль норовирусов в возникновении вспышек острого гастроэнтерита и второе по значимости место, после ротавирусов, в инфекционной кишечной патологии детей первых лет жизни, в том числе и в Российской Федерации; проводятся исследования по разработке норовирусной вакцины; разработаны иммунологические и молекулярно-генетические методы обнаружения норовирусов в клиническом материале и объектах окружающей среды. Все перечисленное определяет необходимость и создает предпосылки для разработки системы эпидемиологического надзора за норовирусной инфекцией и введения ее регистрации и учета в Российской Федерации.

Обзор составили:

д.б.н. Н.А. Новикова __________________________

к.б.н. Н.В. Епифанова _________________________

н.с. Л.Б. Луковникова ________________________

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:

1. Бишоп Р.Ф. Инфекционные возбудители острой диареи. Гастроэнтерология 2. Тонкая кишка. Пер. с англ./ под ред. В.С. Чадвина, С.Ф. Филлипса. – М.: Медицина, 1985. – С. 350 – 351.

2. Боднев С.А., Малеев В.В., Жираковская Е.В. и др. Этиологическая значимость ротавирусов, норовирусов и астровирусов в структуре острых кишечных инфекций у детей раннего возраста Новосибирска в период сезонного подъема заболеваемости // Инфекционные болезни. – 2008. – Т.6, №1. – С. 61 – 64.

3. Буланова И.А., Титова Л.В., Самодова О.В. и др. Этиологическая структура вирусных диарей у детей в Архангельской области // Инфекционные болезни. – 2008. – Т. 6, №1. – С. 58 – 60.

4. Горелов А.В., Дорошина Е.А., Подколзин А.Т. Клинико-эпидемиологические особенности течения норовирусной инфекции у детей // Вестник Российской военно-медицинской академии. – 2008. – Приложение (часть II) 2 (22). – С. 554.

5. Епифанова Н.В., Голицына Л.Н., Луковникова Л.Б., Новикова Н.А. Спектр кишечных вирусов, выявляемых у детей с гастроэнтеритом // Вестник Российской Военно-медицинской Академии, 2008, приложение 2(22), (часть II), С. 550.

6. Калицивирусная инфекция: клиника, диагностика, лечение. Методические рекомендации (№21). – М. – 2006. – 19 С.

7. Каира А.Н., Соломай Т.В. Вспышка норовирусной инфекции среди пациентов многопрофильного стационара // Журнал «Стерилизация и госпитальные инфекции». – 2007. - №1. – С. 40-42.

8. Лагир Г.М., Раевнев А.Е., Кондрашова Л.Н. и соавт. Норовирусная инфекция у детей: клинико-лабораторные аспекты // Актуальные вопросы инфекционной патологии / под ред. Проф. В.М. Семенова. – материалы международного Евро-Азиатского конгресса по инфекционным болезням (Витебск, 5-6 июня 2008 г.). – Витебск. – 2008. – С. 154.

9. Луковникова Л.Б. Епифанова Н.В., Новикова Н.А. Эпидемиологическая и клиническая характеристика норовирусной инфекции у детей Нижнего Новгорода и Нижегородской области // Вестник Российской Военно-медицинской Академии. – 2008, Приложение 2(22). – часть II. – С. 553-554.

10. Луковникова Л.Б., Епифанова Н.Ф., Парфенова О.В., Новикова Н.А. Особенности циркуляции норовирусов различных генотипов на территории Нижнего Новгорода в 2003-2008 гг. // Материалы научно-практической конференции молодых ученых и специалистов научно-исследовательских учреждений Роспотребнадзора «Биологическая безопасность в современном мире», 21-22 апреля 2009 г. Оболенск, Московская область. Оболенск, 2009, С. 62-64.

11. Мухина А.А., Шипулин Г.А., Боковой А.Г. и др. Первый опыт изучения калицивирусной инфекции у детей в Москве // Вопросы вирусологии. – 2002. – № 6. – C. 33 – 37.

12. Подколзин А.Т., Мухина А.А., Шипулин Г.Г. и др. Изучение этиологии острых кишечных инфекций у детей, госпитализированных в инфекционные отделения стационаров Москвы // Инфекционные болезни. – 2004. – Т.2, №4. – С. 85 – 91.

13. Радчикова А.Н., Раздьяконова И.В., Сироткин А.К. Эпидемиология норовирусной инфекции у детей и взрослых в С-Петербурге // Вестник Российской военно-медицинской академии. - 2008. - Приложение (часть II) 2(22). – С. 552 – 553.

14. Сагалова О.И., Смирнова В.Т., Подерачева С.А. Спорадические случаи норовирусной инфекции у взрослых // Материалы VII Российского съезда врачей-инфекционистов «Новые технологии в диагностике и лечении инфекционных болезней», Нижний Новгород, 25-27 октября 2006 г. – Н. Новгород. – 2006. – С. 180.

15. Сагалова О.И., Теплова С.Н., Подколзин А.Т. и др. Показатели секреторного иммунитета желудочно-кишечного тракта у взрослых, больных норовирусной инфекцией // Инфекционные болезни. – 2008. – Т. 6, №2. – С. 29 – 32.

16. Сироткин А.К., Сергеева Н.В., Тихомирова О.В. и др. Этиология вирусных гастроэнтеритов у детей в Санкт-Петербурге в 2001 – 2003 гг. // Матер. науч. конф. «Идеи Пастера в борьбе с инфекциями». – СПб. – 2003. – С. 117 – 118.

17. Agus S.G., Dolin R., Wyatt R.G. et al. Acute infectious nonbacterial gastroenteritis: intestinal histopathology. Histologic end enzymatic alterations during illness produced by the Norwalk agent in man //Ann. Intern. Med. – 1973. – Vol. 79. – P. 18 – 25.

18. Agus S., Falchuk Z., Sessoms C. et al. Increased jejuna IgA synthesis in vitro during acute infectious non bacterial gastroenteritis // Am. J. Dig. Dis. – 1977. – Vol. 19. – P. 127 – 131.

19. Amar C.F., East C.L., Gray J. et.al. Detection by PCR of eight groups of enteric pathogens in 4,627 faecal samples: re-examination of the English case-control Infectious Intestinal Disease Study (1993-1996) // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2007. – Vol. 26, No 5. – P. 311-323.

20. Ambert-Balay K., Bon F., Guyader F. et al. Characterization of New Recombinant Noroviruses // J. Clin. Microbiol. – 2005. – Vol. 43, No. 10. – P. 5179 – 5186.

21. Ando T., Monroe S. S., Gentsch J. R. et al. Detection and differentiation of antigenically distinct small round-structured viruses (Norwalk-like viruses) by reverse transcription-PCR and Southern hybridization // J. Clin. Microbiol. – 1995. – Vol. 33. – P.64 – 71.

22. Appleton H., Buckley M., Thom B. T. et al. Virus-like particles in winter vomiting disease // Lancet. – 1977. – Vol. i. – P. 409 – 411.

23. Asahina A.Y., Lu Y., Wu C. et.al. Potential biosentinels of human waste in marine coastal waters: Bioaccumulation of human noroviruses and enteroviruses from sewage-polluted waters by indigenous mollusks // J. Virol. Meth. 2009. - Vol. 158. – No 1-2. – P. 46-50.

24. Atmar R., Ester M. Diagnosis of noncultivatable gastroenteritis viruses, the human caliciviruses // Clin Microbiol. Rev. – 2001. – Vol. 14, No. 1 – P. 15 – 37.

25. Atmar R.L., Estes M.K. The epidemiologic and clinical importance of Norovirus infection // Gasrtoenterol. Clin. N.Am. – 2006. – Vol. 32. – P. 275 – 290.

26. Atreya C.D. Major foodborne illness causing viruses and current status of vaccines against the diseases // Foodborne. Pathog. Dis. – 2004. – Vol. 1, No. 2. – P. 89 – 96.

27. Ball J.M., Estes M.K., Hardy M.E. et al. Recombinant Norwalk virus-like particles as an oral vaccine // Arch. Virol. – 1996. – V. 12. – P. 243 – 249.

28. Ball J.M., Graham D.Y., Opekun A.R. et al. Recombinant Norwalk virus-like particles given orally to volunteers: phase I study // Gastroenterology. – 1999. – Vol. 117, No. 1. – P. 255 – 257.

29. Baron R.C., Murphy F.D., Greenberg M.B. et al.Norwalk gastrointestinal illness: an outbreak associated with swimming in a recreational lake and secondary person-to-person transmission // Am. J. Epidemiol. – 1982. – Vol. 115. – P. 163 – 172.

30. Becker K.M., Moe C.L., Southwick K.L. et al. Transmission of Norwalk virus during football game // N. Engl. J. Med. – 2000. – Vol. 343. – P. 1223 – 1227.

31. Berg, D.E., Kohn M.A., Farley T.A. et al. Multi-state outbreaks of acute gastroenteritis traced to fecal-contaminated oysters harvested in Louisiana // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol.181. – P.381 – 386.

32. Berke T., Golding B., Jiang X. et al. Phylogenetic analysis of the Caliciviruses // J. Med. Virol. – 1997. – Vol. 52. – P. 419 – 424.

33. Bertolotti – Ciarlet A., Crawford S.E., Hutson A.M. et. al. The 3’ end of Norwalk virus mRNA contains determinants that regulate the expression and stability of the viral capsid protein VP1: a novel function for the VP2 protein // J. Virol. – 2003. – Vol. 77, No. 21. – P. 11603 – 11615.

34. Boga J.A., Melo’n S., Nicieza I. et al. Etiology of sporadic cases of pediatric acute gastroenteritis in Asturias, Spain, and genotyping and characterization of Norovirus strains involved // J. Clin. Microbiol. – 2004. – Vol. 42, No. 6. – P. 2668 – 2674.

35. Bon. F., Fascia P., Dauvergne M. et al. Prevalence of group A rotavirus, human calicivirus, astrovirus, and adenovirus type 40 and 41 infections among children with acute gastroenteritis in Dijon, France // J. Clin. Microbiol. – 1999. – Vol. 37. – P. 3055 – 3058.

36. Boxman I.L., Dijkman R., te Loeke N.A. et al. Environmental swabs as a tool in norovirus outbreak investigation, including outbreaks on cruise ships // J. Food Prot. – 2009. –Vol. 72, No 1. – P. 111-119.

37. Braham S., Iturriza-Gomara M., Gray J. Optimisation of a single-primer sequence-independent amplification (SP-SIA) assay: Detection of previously undetectable norovirus strains associated with outbreaks of gastroenteritis. // J. Virol. Methods.- 2009 Jan 30.

38. Buesa J., Collado B., Lopez-Andujar P. et al. Molecular Epidemiology of Caliciviruses Causing Outbreaks and Sporadic Cases of Acute Gastroenteritis in Spain // J. Clin. Microbiol. – 2002. – Vol. 40, No.8. – P. 2854 – 2859.

39. Bull R.A, Hansman G.S, Clancy L.E. et al. Norovirus recombination in ORF1/ORF2 overlap // Emerg. Infect. Dis. – 2005. – Vol. 11б No 7. – P. 1079-1085.

40. Bull R., Tu E., McIver C. et al. Emergence of a New Norovirus Genotype II.4 Variant Associated with Global Outbreaks of Gastroenteritis // J. Clin. Microbiol. – 2006. – Vol. 44. – P. 327 – 333.

41. Burroughs J.N., Brown F. Presence of a covalently linked protein on calicivirus RNA // J. Gen. Virol. – 1978. – Vol. 4. – P. 443 – 446.

42. Campos G.S., Moreau V.H., Bandeira A. et al. Molecular detection and genetic diversity oh norovirus in hospitalized young adults with acute gastroenteritis in Bahia, Brazil // Arch. Virol. – 2008. – Vol. 153, No. 6. – P. 1125 – 1129.

43. Cannon R.O., Poliner J.R., Hircshhorn R.B. et al. A multistate outbreak of Norwalk virus gastroenteritis associated with consumption of commercial ice // J. Infect. Dis. – 1991. – Vol. 164. – P. 860 – 863.

44. Caracciollo S., Minini C., Colombrita D. et al. Detection of sporadic cases of Norovirus infection in hospitalized children in Italy // New Microbiol. – 2007. – Vol. 30, No. 1. – P. 49 – 52.

45. Carlsson B., Kindberg E., Buesa J. et al. The G428A nonsense mutation in FUT2 provides strong but not absolute protection against symptomatic GII.4 norovirus infection // PLoS ONE. 2009. – Vol. 4. – No 5. - e5593.

46. Caul E.O., Appleton H. The electron microscopical and physical characteristics of small round human viruses: An interim scheme classification // J. Med. Virol. - 1982. - Vol. 9. - P. 257 – 265.

47. Chakravarty S., Hutson A.M., Estes M. K., Prasad B. V. Evolutionary trace residues in noroviruses: importance in receptor binding, antigenicity, virion assembly, and strain diversity // J. Virology. - 2005. - Vol. 79, No. 1. - P. 554-568

48. Charles K.J., Shore J. , Sellwood J. et al. M. Assessment of the stability of human viruses and coliphage in groundwater by PCR and infectivity methods // Appl. Microbiol. 2009. – Vol. 106, No 6. – P. 1827-1837.

49. Chen M.F., Gao Y., Cong X. et al. Etiological study on sporadic viral gastroenteritis among adult in Beijing // Zhonghua Yi Xue Za Zhi. – 2008. – Vol. 88, No. 4. – P. 265 – 267.

50. Chen S.Y., Tsai C.N., Lai M.W. et. al. Norovirus infection as a cause of diarrhea-associated benign infantile seizures // Clin. Ifect. Dis. – 2009. – Vol. 48, No. 4. – P. 849-855.

51. Chharba P., Chitambar S.D. Norovirus genotype Iib associated acute gastroenteritis in India // J. Clin. Virol. - 2008. - Vol. 42, No. 4. - P. 429 – 432.

52. Chikhi-Brachet R., Bon F., Toubiana L. et al. Virus diversity in a winter epidemic of acute diarrhea in France // J. Clin. Microbiol. – 2002. – Vol. 40. – P. 4266 – 4272.

53. Clarke I.N., Lambden P.R. The molecular biology of caliciviruses // J. Gen. Virol. – 1997. – Vol. 78. – P. 291–301.

54. Clarke I.N., Lambden P.R. Organization and expression of calicivirus genes // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 309 – 316.

55. Grima A., Gatt A., Zahra G., Gambin A. Outbreak of norovirus infection in a nursing home for the elderly in Malta, November-December 2008 // Euro surveil. – 2009. – Vol. 14, No 4, pii: 19103

56. da Silva A.K., Le Guyarder F.S., Le Saux J.C. et al. Norovirus removal and particle association in a waste stabilization pond // Environ. Sci. Technol. – 2008. - 15 Vol. 42, No. 24. – P. 9151 – 9157.

57. Daughenbaugh K., Fraser C.S.H.J.W., Hardy M.E. The genome linked protein VPg of the Norwalk virus binds eIF3, suggesting its role in translation initiation complex recruitment // EMBO J. – 2003. – Vol. 22. – P. 2852–2859.

58. De Leon R., Matsui S. M., Baric R. S. et al. Detection of Norwalk virus in stool specimens by reverse transcriptase-polymerase chain reaction and nonradioactive oligoprobes // J. Clin. Microbiol. – 1992. – Vol. 30. – P. 3151 – 3157.

59. de Wit M. A., Koopmans M. P., Kortbeek L. M. et al. Gastroenteritis in sentinel general practices, The Netherlands // Emerg. Infect. Dis. – 2001. – Vol. 7. – P. 82 – 89.

60. de Wit M.A., Koopmans M.P., Kortbeek L.M. et al. Sensor, a population-based cohort study on gastroenteritis in the Netherlands: incidence and etiology // Am. J. Epidemiol. – 2001. – Vol. 154, No. 7. – P. 666 – 674.

61. Doane F. W. Electron microscopy for the detection of gastroenteritis viruses // In A. Z. Kapikian (ed.) Viral infections of the gastrointestinal tract. – N.Y.: Marcel Dekker, Inc. – 1994. – P. 101 – 130.

62. Duizer E., Schwab K.J., Neill F.H. et al. Laboratory efforts to cultivate noroviruses // J. Gen. Virol. – 2004. – Vol. 85. – P. 79 – 87.

63. Estes M.K., Ball J.M., Guerrero R.A. et al. Norwalk virus vaccines: challenges and progress // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 367 – 373.

64. Fankhauser R.L., Noel J.S., Monroe S.S. et al. Molecular epidemiology of "Norwalk-like viruses" in outbreaks of gastroenteritis in the United States // J. Infect. Dis. – 1998. – Vol. 178. – P.1571 – 1578.

65. Fankhauser R.L., Monroe S.S., Noel J.S. et al. Epidemiologic and molecular trends of "Norwalk-like Viruses" associated with outbreaks of gastroenteritis in the United States // J. Infect. Dis. – 2002. – Vol. 186. – P. 1 – 7.

66. Farkas T., Sestak K., Chao W. et al. Characterization of a rhesus monkey calicivirus representing a new genus of Caliciviridae // J. Virol. – 2008. – Vol. 82, No. 11. – P. 5408 – 5416.

67. Fisman D.N., Greer A.L., Broukhanski G., Drews S.J. Of Gastro and the Gold Standard: Evaluation and Policy Implications of Norovirus Test Performance // J. Transl. Med. 2009 Mar 26;7(1):23.

68. Flewett T.H. Diagnosis of enteritis virus // Proc. R. Soc. Med. – 1976. – Vol. 69. – P. 693 – 696.

69. Gallimore G.I., Iturriza-Gomara M., Xerry et al. Intersesonal diversity of norovirus genotypes: emergence and selection of virus variavts // Arch.Virol. – 2007. – Vol. 152. – P. 1595 – 1303.

70. Gilbridge S.J. Lee B.E., Taylor G.D. Forgie S.E. Successful containment of a norovirus outreak in an acute adult psychiatric area // Infect. Control. Hosp. Epidemiol. – 2009. – Vol. 30, No 3. P. 289-291.

71. Glass P.J., White L.J., Ball J.M. et al. The Norwalk virus ORF3 encodes a minor structural protein // J. Virol. – 2000. – Vol. 74. – P. 6581 – 6591.

72. Glass R.I., Noel J., Ando T. et al. The epidemiology of enteric caliciviruses from humans: a reassessment using new diagnostics // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 254 – 261.

73. Gotz H., Ekdahlk K., Lindback J. et al. Clinical spectrum and transmission characteristics of infection with Norwalk-like virus: findings from a large community outbreak in Sweden // Clin. Infect. Dis. – 2001. – Vol.33. – P. 622 – 628.

74. Graham D.Y., Jiang X., Tanaka T. et al. Norwalk virus infection of volunteers: new insights based on improved assays // J. Infect. Dis. – 1994. – Vol.170. – P. 34 – 43.

75. Green J., Gallimore C.I., Norcott J.P. et al. Broadly reactive reverse transcriptase polymerase chain reaction in the diagnosis of SRSV-associated gastroenteritis // J. Med. Virol. – 1995. – Vol. 47. – P. 392 – 398.

76. Green J., Henshilwood K., Gallimore C.I. et al. A nested reverse transcriptase PCR assay for detection of small round-structured viruses in environmentally contaminated molluscan shellfish // Appl. Environ. Microbiol. – 1998. – Vol. 64. – P. 858 – 863.

77. Green K.Y., Lew J.F., Jiang X. et al. Comparison of the reactivities of baculovirus-expressed recombinant Norwalk virus capsid antigen with those of the native Norwalk virus antigen inserologic assays and some epidemiologic observations // J. Clin. Microbiol. – 1993. – Vol. 31. – P. 2185 – 2191.

78. Green S. M., Lambden P. R., Caul E. O. et al. Capsid sequence diversity in small round structured viruses from recent UK outbreaks of gastroenteritis // J. Med. Virol. – 1997. – Vol. 52. – P. 14 – 19.

79. Grohman GS. Viral diarrhoea in children in Australia // In: Tzipori S. Infectious diarrhoea in the young. – Amsterdam: Elsevier Science. – 1985. – P. 25 – 28.

80. Grohmann G., Glass R.I., Gold J. et al. Outbreak of human calicivirus gastroenteritis in a day-care center in Sydney, Australia // J. Clin. Microbiol. – 1991. – Vol. 29. – P. 544 – 550.

81. Guntapong R., Hansman G.S., Oka T. et al. Norovirus and Sapovirus infections in Thailand // Jpn. J. Infect. Dis. – 2004. – Vol. 57, No. 6. – P. 276 – 278.

82. Hale A., Mattick K., Lewis D. et al. Distinct epidemiological patterns of Norwalk-like virus infection // J. Med. Virol. – 2000. – Vol. 62. – P. 99 – 103.

83. Hansen S., Stamm-Balderjahn S., Zuschneid I. et. al. Closure of medical departments during nosocomial outbreaks: data from a systematic analysis of the literature // J. Hosp. Infect. – 2007. – Vol. 65, No 4. – P. 348-353.

84. Harada S., Okada M., Yahiro S. et.al.Surveillance of pathogens in outpatients with gastroenteritis and characterization of sapovirus strains between 2002 and 2007 in Kumamoto Prefecture, Japan // J. Med. Virol. – 2008. - Vol. 81, No 6. – P. 1117–1127.

85. Hardy M.E. Norovirus protein structure and function // FEMS Microbiology Letters. – 2005. – Vol. 235. – P. 1 – 8.

86. Harrington P.R., Lindesmith L., Yount B. et al. Binding of Norwalk virus-like particles to ABH histo-blood group antigens is blocked by antisera from infected human volunteers or experimentally vaccinated mice // J. Virol. – 2002. – Vol. 76. – P. 12335 – 12343.

87. Harrington P.R., Yount B., Johnston R.E. et al. Systemic, mucosal, and heterotypic immune induction in mice inoculated with Venezuelan equine encephalitis replicons expressing Norwalk virus-like particles // J. Virol. – 2002. – Vol. 76. – P. 730 – 742.

88. Hedlund K.O., Rubilar-Abreu E., Svensson L. Epidemiology of calicivirus infection in Sweden, 1994-1998 // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 275 – 280.

89. Herbert T.P., Brierley I., Brown T.D.K. Detection of the ORF3 polypeptide of feline calicivirus in infected cells and evidence for its expression from a single, functionally bicistronic, subgenomic mRNA // J. Gen. Virol. – 1996. – Vol. 77. – P. 123 – 127.

90. Hernandez-Morga J. Leon-Felix J., Peraza-Garay F. et al. Detection and characterization of hepatitis A virus and Norovirus in estuarine water samples using ultrafiltration - RT-PCR integrated methods // J. Appl. Microbiol. 2009/ - Vol. 106. No 5. – P. 1579-1590.

91. Ho, E. C., Cheng, P. K., Lau A. W. et. al. Atypical norovirus epidemic in Hong Kong during summer of 2006 caused by a new genogroup II/4 variant. // J. Clin. Microbiol. – 2007. – Vol. 45. – P. 2205–2211.

92. Huang P., Farkas T., Marionneau S. et al. Noroviruses bind to human ABO, Lewis, and secretor Histo-blood group antigens: identification of 4 distinct strain-specific patterns // J. Infect. Dis. – 2003. – Vol. 188. – P. 19 – 31.

93. Huang Z., Elkin G., Maloney B.J. et al. Virus-like particle expression and assembly in plants: hepatitis B and Norwalk viruses // Vaccine. – 2005. – Vol. 23. – P. 1851 – 1858.

94. Hutson A.M., Atmar R.L., Markus M.E. et al. Norwalk virus-like particle hemagglutination by binding to h histo-blood group antigens // J. Virol. – 2003. – Vol. 77. – P. 405 – 415.

95. Hutson A.M., Atmar R.L., Estes M.K. Norovirus disease: changing epidemiology and host susceptibility factors // Trends in Microbiology. – 2004. – Vol. 12, No. 6. – P. 279 – 286.

96. Inouye S., Yamashita K., Yamadera S. et al. Surveillance of viral gastroenteritis in Japan: Pediatric cases and outbreak incidents // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 270 – 274.

97. Iritani N., Kaida A., Kubo H. et al. Epidemic of genotype GII.2 noroviruses during spring 2004 in Osaka City, Japan // J. Clin. Microbiol. – 2008. – Vol. 46, No. 7. – P. 2406 – 2409.

98. Jiang, X., , Graham D. Y. Wang J. Estes M.K. Norwalk virus genome cloning and characterization // Science. – 1990. – Vol. 250 – P. 1580 – 1583.

99. Jiang, X., Wang J., Graham D. Y. et al. Detection of Norwalk virus in stool by polymerase chain reaction // J. Clin. Microbiol. – 1992. – Vol. 30. – P. 2529 – 2534.

100. Jiang X., Wang M., Graham D. Y. et al. Expression, self-assembly, and antigenicity of the Norwalk virus capsid protein // J. Virol. – 1992. – Vol. 66. – P. 6527 – 6532.

101. Jiang X., Wang M., Wang K. et al. Sequence and genomic organization of Norwalk virus // Virology. – 1993. – Vol. 195. – P. 51 – 61.

102. Jiang, X., Huang P.W., Zhong W. M. et al. Design and evaluation of a primer pair that detects both Norwalk- and Sapporo-like Caliciviruses by RT-PCR // J. Virol. Methods. – 1999. – Vol. 83. – P. 145 – 154.

103. Jin Y., Cheng W.X., Yang X.M. et. al. Viral agents associated with acute gastroenteritis in children hospitalized with diarrhea in Lanzhou, China // J. Clin. Virol. – 2009. – Vol. 44, No 3. P. 238-241.

104. Jin M., Xie H.P., Duan Z.J. et al. Emergence of the GII4/2006b variant and recombinant noroviruses in China // J. Med. Virol. – 2008. – Vol. 80, No. 11. – P. 1997 – 2004.

105. Kageyama T., Kojima S., Shinohara M. et al. Broadly reactive and highly sensitive assay for Norwalk-like viruses based on Real-Time Quantitative Reverse Transcription-PCR // J. Clin. Microbiol. – 2003. – Vol. 41, No. 4. – P. 1548 – 1557.

106. Kanerva M., Maunula L., Lappalainen M. et. al. Prolonged norovirus outbreak in a Finnish tertiary care hospital caused by GII.4-2006b subvariants // J. Hosp. Infect. -2009 . –Vol. 71, No 3. – P. 206-213.

107. Kapikian A.Z., Wyatt R.G., Dolin R. et al. Visualization by immune electron microscopy of a 27-nm particle associated with acute infectious nonbacterial gastroenteritis // J. Virol. – 1972. – Vol. 10. – P. 1075 – 1084.

108. Kapikian A. Z., Yolken R. H., Greenberg H. B. et al. Gastroenteritis viruses // InLennette E.H. and Schmidt N.J. (ed.). Diagnostic procedures for viral, rickettsial, and chlamydial infections. – American Public Health Association, Washington: D.C. – 1979. – P. 927 – 995.

109. Kaplan J.E., Gary G.W., Baron R.C. et al. Epidemiology of Norwalk gastroenteritis and the role of Norwalk virus in outbreaks of acute nonbacterial gastroenteritis // Ann. Intern. Med. – 1982. – Vol. 96. – P. 756 – 761.

110. Kaplan J.E., Feldman R., Campbell D.S. et al. The frequency of a Norwalk-like pattern of illness in outbreaks of acute gastroenteritis // Am. J. Public Health. – 1982 – Vol. 72, No 12. – P. 1329-1332.

111. Karim M.R., Rhodes E.R., Brinkman N. et al. A New Electropositive Filter for Concentrating Enterovirus and Norovirus from Large Volumes of Water // Appl. Environ. Microbiol. – 2009. – Vol. 75, No 8. – P. 2393-2399.

112. Kaufman S.S., Chatterjee N.K., Fuschino M.E. et al. Calicivirus enteritis in an intestinal transplant recipient // Am. J. Transplant. – 2003. – Vol.3. – P. 764 – 768.

113. Kele B., Abrok M.P., Deak J. Sporadic Norovirus infections among hospitalized and non-hospitalized 0-3-year-old infants // Scand. J. Infect. Dis. – 2008. – Vol. 4. – P. 1 – 3.

114. Khamrin P., Maneekarn N., Peerakome S. et. al. Genetic diversity of noroviruses and sapoviruses in children hospitalized with acute gastroenteritis in Chiang Mai, Thailand. // J. Med. Virol. – 2007. al. – Vol. 79, No 12. – P. 1921-1926.

115. Khan R.R., Lawson A.D., Minnich L.L. et. al. Gastrointestinal norovirus infection associated with exacerbation of inflammatory bowel disease // J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. – 2009. – Vol. 48, No. 3. – P. 328-333.

116. Kojima S., Kageyama T., Fukushi S. et al. Genogroup-specific PCR primers for detection of Norwalk-like viruses // J. Virol. Methods. – 2002. – Vol. 100. – P. 107 – 114.

117. Koopmans M., Vinje J., de Wit M. et al. Molecular epidemiology of human enteric caliciviruses in the Netherlands // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 262 – 269.

118. Koopmans M. Progress in understanding Norovirus epidemiology // Curr. Opin. Infect. Dis. – 2008. – Vol. 21, No. 5. – P. 544 – 552.

119. Kroneman A., Vennema H., Harris J. et al. Increase in norovirus activity reported in Europe // Euro Surveill. – 2006. – Vol. 11. – E061214.1.

120. Kroneman A., Verhoef L. , Harris J. et. al. Analysis of Integrated Virological and Epidemiological Reports of Norovirus Outbreaks Collected within the Foodborne Viruses in Europe Network from 1 July 2001 to 30 June 2006 // J. Clin. Microbiol. – 2008. – Vol. 46, No 9. – P. 2959-2965.

121. Kuo H.W., Schmid D., Jevolcan S. et al. A foodborne outbreak due to norovirus in Austria, 2007 // J. Food Prot. – 2009. Vol. 72, No 1. – P. 193–196.

122. Kuo H.W., Schmid D., Schwarz K. et al. A non-foodborne norovirus outbreak among school children during a skiing holiday, Austria, 2007 // When. Klin. Wochenschr. – 2009. – Vol. 121, No 3–4. – P.120–124.

123. Kuritsky J.N., Osterholm M.T., Greenberg H.B. et al. Norwalk gastroenteritis: a community outbreak associated with bakery product consumption // Ann. Intern. Med. – 1984. – Vol. 100. – P. 519 – 521.

124. La Rosa G., Pourshaban M., Iaconelli M. et al. Detection of genogroup IV noroviruses in environmental and clinical samples and partial sequencing through rapid amplification of cDNA ends // Arch. Virol. – 2008. – Vol. 153. – P. 2077 – 2083.

125. Lawson H.W., Lawson H.B., Braun M.M. et al. Waterborne outbreak of Norwalk virus gastroenteritis at a southwest US resort: role of geological formations in contamination of well water // Lancet. – 1991. – Vol. 337. – P. 1200 – 1204.

126. Le Guyader F., Estes M. K., Hardy M. E. et al. Evaluation of a degenerate primer for the PCR detection of human Caliciviruses // Arch. Virol. – 1996. – Vol. 141. – P. 2225 – 2235.

127. Levett P.N., Gu M., Luan B. et al. Longitudinal study of molecular epidemiology of small round structured viruses in a pediatric population // J. Clin. Microbiol. – 1996. – Vol. 34. – P. 1497 – 1501.

128. Levy A.G., Widerlite T., Schwartz C.J. et al. Jejunal adenylate cyclase activity in human subjects during viral gastroenteritis // Gastroenterology. – 1976. – Vol. 70. – P. 321 – 325.

129. Lindell A.T., Grillner L., Svensson L. et al. Molecular Epidemiology of Norovirus Infections in Stockholm, Sweden, during the Years 2000 to 2003: Association of the GGIIb Genetic Cluster with Infection in Children // J. Clin. Microbiol. – 2005. – Vol. 43, No. 3. – P. 1086 – 1092.

130. Lindesmith L., Moe C., Marionneau S. et al. Human susceptibility and resistance to Norwalk virus infection // Nat. Med. – 2003. – Vol. 9. – P. 548 – 553.

131. Lindesmith L.C., Eric F. Donaldson E.F., Anna D. LoBue A.D. et al. Mechanisms of GII.4 Norovirus Persistence in Human Populations // PLoS Medicine. – 2008. – Vol. 5. – P. 269 – 290.

132. LoBue A.D., Lindesmith L., Yount B. et al. Multivalent norovirus vaccines induce strong mucosal and systemic blocking antibodies against multiple strains // Vaccine. – 2006. – Vol. 24. – P. 5220 – 5234.

133. Long S.M., Adak G.K., O’Brien S.J. et al.General outbreaks of infectious intestinal disease linked with salad vegetables and fruit, England and Wales, 1992-2000 // Commun. Dis. Public Health. – 2002. – Vol. 5. – P. 101 – 105.

134. Lopman B., Vennema H., Kohli E. et al. Increase in viral gastroenteritis outbreaks in Europe and epidemic spread of new Norovirus variant // Lancet. – 2004. – Vol. 363. – P. 682 – 688.

135. Lopman B, Zambon M, Brown DW. The evolution of norovirus, the "gastric flu". // PLoS Med. – 2008. – Vol. 5, No 2. – e42.

136. Madore H.P., Treanor J.J., Dolin R. Characterization of the Snow Mountain agent of viral gastroenteritis // J. Virol. - 1986. - Vol. 58. - P. 487 – 492.

137. Malasao R., Maneekarn N., Khamrin P. et al. Genetic diversity of norovirus, sapovirus, and astrovirus isolated from hospitalized with acute gastroenteritis in Chiang Mai, Thailand // J. Med. Virol. – 2008. – Vol. 80. – P. 1749 – 1755.

138. Marionneau S., Ruvoen N., Le Moullac-Vaidye B. et al. Norwalk virus binds to histo-blood group antigens present on gastroduodenal epithelial cells of secretor individuals // Gastroenterology. – 2002. – Vol. 122. – P. 1967 – 1977.

139. Marks P.J., Vipond I.B., Careisle D. et al. Evidence for airborne transmission of Norwalk-like virus (NLV) in a hotel restaurant // Epidemiol. Infect. – 2000. – Vol. 124. – P. 481 – 487.

140. Martella V., Campolo M., Lorusso E. et al. Norovirus in captive lion cub (Panthera leo) // Emerg.Infect. Dis. – 2007. – Vol. 13. – P. 1071 – 1073.

141. Martella V., Lorusso E., Decaro N. et al. Characterization of Canine Norovirus // Emerg.Infect. Dis. – 2008. – Vol. 14, No. 8. – P. 1306 – 1308.

142. Mason H.S., Ball J.M., Shi J.J. et al. Expression of Norwalk virus capsid protein in transgenic tobacco and potato and its oral immunogenicity in mice // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1996. – Vol. 93, No. 11. – P. 5335 – 5340.

143. Matson D.O., Zhong W.M., Nakata S. et al. Molecular characterization of a human calicivirus with loser sequence relatedness to animal Caliciviruses than other known human Caliciviruses // J. Med. Virol. – 1995. – Vol. 45. – P. 215 – 222.

144. Matsui S.M., Kim J.P., Greenberg H.B. et al. The isolation and characterization of a Norwalk virus-specific cDNA // J. Clin. Investig. – 1991. – Vol. 87. – P. 1456 – 1461.

145. Matsui S.M., Greenberg H.B. Immunity to Calicivirus Infection // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 331 – 335.

146. Matsuno S., Sawada R., Kimura K. et al. Sequence analysis of SRSV in fecal specimens from an epidemic of infantile gastroenteritis, October to December 1995, Japan // J. Med. Virol. – 1997. – Vol. 52, No. 4. – P. 377 – 380.

147. Matthews R.E. Classification and nomenclature of viruses // Intervirology. - 1979. – Vol. 12. – P. 129 – 296.

148. McCarthy M., Estes M.K., Hyams K.C. Norwalk-like virus infection in military forces: epidemic potential, sporadic disease, and the future direction of prevention and control efforts // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 387 – 391.

149. Mead P.S., Slutsker L., Dietz V. et al. Food-related illness and death in the United States. // Emerg. Infect. Dis.- 1999. Vol. 5, No 5. – P. 607-625.

150. Meeroff G.C., Schreiber D.S., Trier J.S. et al. Abnormal gastric motor function in viral gastroenteritis // Ann. Intern. Med. – 1980. – Vol. 92. – P. 370 – 373.

151. Meyers G., Wirblich C., Thiel H.J. Genomic and subgenomic RNAs of rabbithemorrhagic disease virus are both protein-linked and packaged into particles // Virology. – 1991. – Vol. 184. – P. 677 – 686.

152. Moe C.L., Gentsch J., Grohmann G. et al. Application of PCR to detect Norwalk virus in fecal specimens from outbreaks of gastroenteritis // J. Clin. Microbiol. – 1994. – Vol. 32. – P. 642 – 648.

153. Morotti R.A., Kaufman S.S., Fishbein T.M. et al. Calicivirus infection in pediatric small intestine transplant recipients: pathological considerations // Hum. Pathol. – 2004. – Vol. 35. – P. 1236 – 1240.

154. Motomura K., Oka T., Yokoyama M. et al. Identification of monomorphic and divergent haplotypes in the 2006-2007 norovirus GII/4 epidemic population by genomewide tracing of evolutionary history // J. Virol. – 2008. – Vol. 82, No. 22. – P. 11247 – 11262.

155. Mounts A.W., Ando T., Koopmans M. et al. Cold weather seasonality of gastroenteritis associated with Norwalk-like viruses // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 284 – 287.

156. Murata T., Katsushima N., Mizuta K. et al. Prolonged Norovirus shedding in infants < or = 6 months of age with gastroenteritis // Pediatr. Infect. Dis. – 2007. – Vol. 26, No. 1. – P. 46 – 49.

157. Mutoh K., Hakamata A., Yagi H. et al. Evaluation of new commercial immunochromatography kit for norovirus in feces // Pediatr. Int. – 2009. Vol. 51. – No 1. – P. 164–166.

158. Nakagomi T., Correia J.B., Nakagomi O. et al. Norovirus infection among children with acute gastroenteritis in Recife, Brazil: disease severity is comparable to rotavirus gastroenteritis // Arch. Virol. – 2008. – Vol. 153, No. 5. – P. 957 – 960.

159. National Institute of Infectious Diseases and Infectious Diseases Control Division. Viral gastroenteritis, Japan, October to December 1995 // Jpn. J. Med. Sci. Biol. – 1996. – Vol. 49. – P. 28 – 29.

160. Nayak M.K., Balasubramanian G., Sahoo G.C. et al. Detection of a novel intergenogroup recombinant norovirus from Kolkata, India // Virology. – 2008. – Vol. 377, No. 1. – P. 117 – 123.

161. Nguyen T.A., Hoang L., Pham le D. et al. Norovirus and Sapovirus infections among children with acute gastroenteritis in Ho Chi Minh City during 2005-2006 // J. Trop. Pediatr. – 2008. – Vol. 54, No. 2. – P. 102 – 113.

162. Norovirus activity – United States, 2002 // MMWR Morb. Mortal. Wkly Rep. – 2003. – No. 52. – P. 41 – 45.

163. Norovirus activity – United States, 2006-2007 // MMWR Morb. Mortal. Wkly Rep. 2007. – Vol. 56. – No 33. P. 842-846.

164. Okabayashi T., Yokoto S., Ohkoshi Y. et al. Occurrence of norovirus infections unrelated to norovirus outbreaks in an asymptomatic food handler population // J. Clin. Microbiol. – 2008. – Vol. 46. – P. 1985 – 1988.

165. Okada S., Sekine S., Ando T. et al. Antigenic characterization of small, round-structured viruses by immune electron microscopy // J. Clin. Microbiol. – 1990. – Vol. 28. – P. 1244 – 1248.

166. Oliver S.L., Asobayire E., Dastjerdi A.M., Bridger J.C. Genomic characterization of the unclassified bovine enteric virus Newbury agent-1 (Newbury1) endorses a new genus in the family Caliciviridae // Virology. – 2006. – Vol. 350, No 1.- P. 240-250.

167. Ozawa K, Oka T, Takeda N, Hansman GS. Norovirus infections in symptomatic and asymptomatic food handlers in Japan // J Clin Microbiol. 2007. – Vol. 45, No 12. – P. 3996-4005

168. Outbreak of acute gastroenteritis associated with Norwalk-like viruses among British military personnel – Afghanistan, May 2002 // MMWR Morb. Mortal. Wkly. Rep. – 2002. – No. 51. – P. 477 – 479.

169. Pang X., Honma S., Nakata S. et al. Human caliciviruses in acute gastroenteritis of young children in the community // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 288 – 294.

170. Parrino T.A., Schreiber D.S., Trier J.S. et al. Clinical immunity in acute gastroenteritis caused by Norwalk agent // N. Engl. J. Med. – 1977. – Vol. 297. – P. 86 – 89.

171. Patel M.M., Widdowson M.A., Glass R.I. et al. Systematic literature review of role of human noroviruses in sporadic gastroenteritis // Emerg. Infect. Dis. – 2008. – Vol. 14, No. 8. – P. 1224 – 1231.

172. Patterson T., Hutchings P., Palmer S. Outbreak of SRSV gastroenteritis at an international conference traced to food handled by a post-symptomatic caterer // Epidemiol. Infect. – 1993. – Vol. 111. – P. 157 – 162.

173. Petrinca A.R., Donia D., Pierangeli A. et al. Presence and environmental circulation of enteric viruses in three different wastewater treatment plants. // Appl. Microbiol. 2009. – Vol. 106, No 5. – P. 1608-1617.

174. Phan T.G., Nguyen T.A., Yan H. et al. Development of a novel protocol for RT-multiplex PCR to detect diarrheal viruses among infants and children with acute gastroenteritis in Eastern Russia // Clin. Lab. – 2005. – Vol. 51. – P. 429 – 435.

175. Phan T.G., Kaneshi K., Ueda Y. et al. Genetic heterogeneity, evolution, and recombination in noroviruses // J. Med. Virol. – 2007. – Vol. 79, No. 9. – P. 1388 – 1400.

176. Rockx B., de Wit M., Vennema H. et al. Natural history of human calicivirus infection: a prospective cohort study // Clin. Infect. Dis. – 2002. – Vol. 35. – P. 246 – 253.

177. Reuter G., Pankovics P., Szucs G. Genetic drift of norovirus genotype GII-4 in seven consecutive epidemic seasons in Hungary // J. Clin. Virol. – 2008. - Vol. 42. – P. 135–140.

178. Ryder R.W., Singh N., Reeves W. et al. Evidence of immunity induced by naturally acquired rotavirus and Norwalk virus infection on two remote Panamanian islands // J. Infect. Dis. – 1985. – Vol.151. – P. 99 – 105.

179. Said M. A., Perl T. M., Sears C. L. Healthcare epidemiology: gastrointestinal flu: norovirus in health care and long-term care facilities // Clin. Infect. Dis. – 2008. – Vol. 47. – P. 1202–1208.

180. Schreiber D.S., Blacklow N.R., Trier J.S. The mukosal lesion of the proximal small intestine in acute infectious nonbacterial gastroenteritis // N. Engl. J. Med. – 1973. – Vol. 288. – P. 1318 – 1323.

181. Sdiri-Loulizi K., Gharbi-Khélifi H., de Rougemont A. et. al. Acute infantile gastroenteritis associated with human enteric viruses in Tunisia // J. Clin. Microbiol. – 2008. – Vol. 46, No 4. – P. 1349-1355.

182. Seah E.L., Gunesekere I.C., Marshall J.A. et al. Variation in ORF3 of genogroup 2 Norwalk-like viruses // Arch. Virol. – 1999. – Vol. 144. – P. 1007–1014.

183. Shinkawa N., Noda M., Yoshizumi S. et al. Molecular Epidemiology of Noroviruses Detected in Food Handler-Associated Outbreaks of Gastroenteritis in Japan // Intervirology. – 2008. – Vol. 51. – P. 422–426.

184. Siebenga J., Vennema H., Renchens B. et al. Epochal evolution of GGII.4 norovirus capsid proteins from 1995 to 2006 // J. Virol. – 2007. – Vol. 81, No. 18. – P. 9932 – 9941.

185. Siebenga J, Kroneman A, Vennema H. et al. Food-borne viruses in Europe network report: the norovirus GII.4 2006b (for US named Minerva-like, for Japan Kobe034-like, for UK V6) variant now dominant in early seasonal surveillance // Euro Surveill. 2008. – Vol. 13, No 2. – pii: 8009.

186. Siebenga J.J., Beersma M.F., Vennema H. et al. High prevalence of prolonged norovirus shedding and illness among hospitalized patients: a model for in vivo molecular evolution // J. Infect. Dis. 2008. – Vol.198, No 7. – P.994–1001.

187. Sommer C., Mueller W., Resch B. Two nosocomial norovirus outbreaks in the neonatal intensive and intermediate care unit // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2009. - Apr 7.

188. Straub T.M., Höner zu Bentrup K., Orosz-Coghlan P., et. al. In vitro cell culture infectivity assay for human noroviruses // Emerg. Infect. Dis. 2007. – Vol.13, No 3. – P. 396-403.

189. Subekti D., Lesmana M., Tjaniadi P. et al. Incidence of Norwalk-like viruses, rotavirus and adenovirus infection in patients with acute gastroenteritis in Jakarta, Indonesia // FEMS Immunology and Medical Microbiology. – 2002. – Vol. 33. – P. 27 – 33.

190. Tacket C.O., Mason H.S., Losonsky G. et al. Human immune responses to a novel norwalk virus vaccine delivered in transgenic potatoes // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 182. – P. 302 – 305.

191. Tacket C.O., Sztein M.B., Losonsky G.A. et al. Humoral, mucosal, and cellular immune responses to oral Norwalk virus-like particles in volunteers // Clin Immunol. – 2003. – Vol. 108. – P. 241 – 247.

192. Tacket C.O. Plant-derived vaccines against diarrheal diseases // Vaccine. – 2005. – Vol. 23. – P. 1866 – 1869.

193. Tan M., Hegde R.S., Jiang X. et al. The P domain of norovirus capsid protein forms dimer and binds to histo-blood group antigen receptors // Virol. – 2004. – No. 78. – P. 6233 – 6242.

194. Tan M. , Xia M., Chen Y. et. al. Conservation of Carbohydrate Binding Interfaces — Evidence of Human HBGA Selection in Norovirus Evolution // PLoS ONE. – 2009. – Vol. 4, No 4. - e5058. P. 1-14.

195. Thornhill T. S., Wyatt R. G., Kalica A. R. et al. Detection by immune electron microscopy of 26–27 nm virus-like particles associated with two family outbreaks of gastroenteritis // Infect. Dis. – 1977. – Vol.135. – P. 20 – 27.

196. Thornton A.C., Jennings-Conklin K.S., Malkanthie I.M. Noroviruses: Agents in Outbreaks of Acute Gastroenteritis // Disaster Management & Response. – 2004. – Vol. 2, No. 1. – P. 4 – 9.

197. Tompkins D. S., Hudson M. J., Smith H. R. et al. A study of infectious intestinal disease in England: microbiological findings in cases and controls // Commun. Dis. Public Health. – 1999. – Vol. 2. – P. 108 – 113.

198. Tu E.T., Nguyen T., Lee P. et al. Norovirus GII.4 strains and outbreaks, Australia // Emerg. Infect. Dis. – 2007. – Vol. 13. – P. 1128 – 1130.

199. Tu E., Bull R., Greening G. et al. Epidemics of gastroenteritis during 2006 were associated with the spread of norovirus GII.4 variants 2006a and 2006b // Clin. Infect. Dis. – 2008. – Vol. 46. – P. 413 – 420.

200. Tu E.T., Bull R.A., Kim M.J. et al. Norovirus excretion in an aged-care setting // J Clin Microbiol. 2008. – Vol. 46, No 6. – P. 2119-2121.

201. Turcios R.M., Widdowson M.A., Sulka A.C. et. al. Reevaluation of epidemiological criteria for identifying outbreaks of acute gastroenteritis due to norovirus: United States, 1998-2000 // Clin. Infect. Dis. 2006. - Vol. 42, No 7. – P. 964-969.

202. Turcios-Ruiz R.M., Axelrod P., St. John K. et al. Outbreak of necrotizing enterocolitis caused by norovirus in a neonatal intensive care unit. // J Pediatr. 2008. – Vol. 153. – No 3. P. 339-344.

203. Vanderpas J., Louis J., Reynders M. et. al. Mathematical model for the control of nosocomial norovirus // J. Hosp. Infect. 2009. – Vol. 71, No 3, P. 214-222.

204. Venkataram Prasad B.V., Hardy M.E., Estes M.K. Structural studies of rcombinant Norwalk capsids // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181. – P. 317 – 321.

205. Vennema H., Kohli E., Brown D. et al. International spread in 8 countries in Europe of new pol-type calicivirus associated with 3 different capsids facilitated by food- and waterborne transmission. XIIth International Congress of Virology, Paris, France, 2002.

206. Verhoef L., Depoortere E., Boxman I. et al. Emergence of New Norovirus Variants on Spring Cruise Ships and Prediction of Winter Epidemics // Emerg. Infect. Dis. - 2008. - Vol. 14, No. 2. – P. 238-243.

207. Vinje J., Green J., Lewis D. C. et al. Genetic polymorphism across regions of the three open reading frames of “Norwalk-like viruses.” // Arch. Virol. – 2000. – Vol. 145. – P. 223 – 241.

208. Vipond I.B., Pelosi E., Williams J.еt al. A diagnostic EIA for detection of the prevalent SRSV strain in United Kingdom outbreaks of gastroenteritis // J. Med. Virol. – 2000. – Vol. 61. – P. 132 – 137.

209. Wang J., Jiang X., Madore H. P. et al. Sequence diversity of small round structured viruses // J. Virol. – 1994. – Vol. 68. – P. 5982 – 5990.

210. Wang Q.H., Han M.G., Cheetham S. et al. Porcine noroviruses related to human noroviruses // Emerg. Infect. Dis. - 2005. - Vol. 11, No. 12. - P. 1874 – 1881.

211. Wheeler JG, Sethi D, Cowden JM et. al. Study of infectious intestinal disease in England: rates in the community, presenting to general practice, and reported to national surveillance. The Infectious Intestinal Disease Study Executive // BMJ. 1999. – Vol. 318 (7190). – P. 1046-50.

212. Widdowson M.A., Cramer E.H., Hadley L. et al. Outbreaks of acute gastroenteritis on cruise ships and on land: identification of a predominant circulating strain of Norovirus – United States, 2002 // J. Infect. Dis. – 2004. – Vol. 190. – P. 27 – 36.

213. Widerlite L., Trier J.S., Blacklow N.R. et al. Structure of the gastric mucosa in acute infectious nonbacterial gastroenteritis // Gastroenterology. – 1975. – Vol. 38. – P. 425 – 430.

214. Wilhelmi I., Roman E., Sanchez-Fauquier A. Viruses causing gastroenteritis // Clin. Microbiol. Infect. – 2003. – Vol. 9. – P. 247 – 262.

215. Wright P. J., Gunesekere I. C., Doultree J. C. et al. Small round-structured (Norwalk-like) viruses and classical human Caliciviruses in Southeastern Australia, 1980-1996 // J. Med. Virol. – 1998. – Vol. 55. – P. 312 – 320.

216. Xerry J., Gallimore C.I., Iturriza-Gómara M. et. al. Transmission events within outbreaks of gastroenteritis determined through analysis of nucleotide sequences of the P2 domain of genogroup II noroviruses // J. Clin Microbiol. 2008. – Vol. 46, No 3. – P. 947-953.

217. Yoon J.S., Lee S.G., Hong S.K. et al. Molecular epidemiology of Norovirus infections in children with acute gastroenteritis in South Korea in November 2005 through November 2006 // J. Clin. Microbiol. – 2008. – Vol. 46, No. 4. – P. 1474 – 1477.

218. Zahorsky J. Hyperemesis hiemis or the winter vomiting disease // Arch. Pediatr. – 1929. – Vol. 46. – P. 391 – 395.

219. Zheng D.P., Ando T., Fankhauser R.L. et al. Norovirus classification and proposed strain nomenclature // Virology. - 2006. - Vol. 346. - P. 312 – 323.

Дата добавления: 2018-11-24; просмотров: 169; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:

⇐ Предыдущая 1 2 3 4 56

Мы поможем в написании ваших работ!