Полуколичественный метод определения степени бактериурии
| Количество колоний в секторе | Количество микробных клеток в 1мл. мочи | |||
| Сектор I | Сектор II | Сектор III | Сектор IV | |
| 1-6 | - | - | - | Менее 1000 |
| 8-20 | - | - | - | 3000 |
| 20-30 | - | - | - | 5000 |
| 30-60 | - | - | - | 10 000 |
| 70-80 | - | - | - | 50 000 |
| 100- 150 | 5-10 | - | - | 100 000 |
| Не сосчитать | 20-30 | - | - | 500 000 |
| ------« -------- | 40-60 | - | - | 1 млн. |
| ----« ------- | 100-140 | 10-20 | - | 5 млн. |
| -------«--------- | Не сосчитать | 30-40 | - | 10 млн |
| -------«-------- | --------«-------- | 60-80 | Единичные колонии | 100 000 млн. |
Вопросы к разделу «Микробиологическое исследование мочи»
1. Перечислите показания к микробиологическому исследованию мочи.
2. Опишите особенности забора материала
3. Сформулируйте цель микробиологического исследования мочи
4. Перечислите основных возбудителей воспалительных процессов в мочевыделительной системе (МВС)
5. Перечислите группы риска, подверженные инфекциям МВС
6. На какие питательные среды производят первичный посев мочи, особенности.
7. Опишите ход работы второго дня микробиологического исследования (оценка посева по методу Голда, оценка посева на кровяной агар, отбор колоний для дальнейшего исследования)
8. Чем определяется выбор тестов для идентификации выделенных культур
9. Интерпретация результатов исследования:
А) определение этиологической значимости выделенного микроорганизма
|
|
|
Б) дифференциация инфекционного процесса от контаминации нормальной микрофлорой
ВНУТРИБОЛЬНИЧНАЯ ПНЕВМОНИЯ
Пневмония – острое инфекционное заболевание, преимущественно бактериальной природы, характеризующееся очаговым поражением респираторных отделов легких с наличием внутриальвеолярной экссудацией и различной степени выраженности лихорадки и интоксикации.
Пневмония как нозологическая форма заболевания исключает:
- синдром пневмонии, вызванный физическими (лучевая пневмония), химическими (бензиновая пневмония) факторами.
- пневмонии аллергического происхождения (гиперсенситивная пневмония, эзинофильная пневмония)
- сосудистые поражения (инфаркт легкого на почве тромбоэмболии ветвей легочной артерии)
-пневмонии, вызванные облигатными патогенами (Ку-риккетсиоз, чума, корь, грипп и др.). В отделениях гематологии преобладают:Enterococcus spp (31%), S. viridans 24%, C. albicans (14%), Acinetobacter baumanii (14%), St. рneumoniae ( 7%), S. aureus (7%), S. epidermidis
( 3%)
Этиологическая структура пневмоний в отделениях интенсивной терапии
| Гр(-) бактерии (39%) | Гр(+) бактерии (61%) | Грибы (1%) |
| Acinetobacter spp 12 % | Enterococcus spp 27% | C. albicans, C. krusei |
| P. aeruginosa 12% | Streptococcus spp 12% | Aspergillus fumigatus, A.flavus, A.niger |
| E. coli 9% | Коагулазонегативные стафилококки 16% | Fusarium spp |
| Enterobacter spp 3% | S. аureus 6% |
Не индентифицированы 3%
|
|
|
ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА
1. Методы лабораторной диагностики: бактериоскопический и бактериологический.
2. Контингент обследуемых:
- при поступлении в стационар с диагнозом «пневмония»
- при возникновении пневмонии во время пребывания по другому поводу
- по показаниям у больных, лечащихся «на дому» и или амбулаторно
- повторно (в динамике) обследуемые в процессе лечения.
Цель лабораторного исследования – расшифровка, установление этиологии пневмонии. В связи с этим решаются следующие задачи:
- определение видов микроорганизмов, присутствующих в исследуемом материале
- определение содержания микроорганизмов в 1мл (1г) материала, т.к. этиологически значимым признается 107 и выше
- определение преобладающего вида микроорганизмов, т.к. это также является одним из показателей его этиологической роли
Результаты бактериологического исследования интерпретируются с учетом анамнестических данных, клиники заболевания, результатов антибактериальной терапии, иммунного статуса больного.
|
|
|
МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ И СРОКИ ЗАБОРА.
Материал должен быть взят до начала антибактериальной терапии или через 2-3 дня после отмены, необходимые для элиминации из организма. Посевы проводятся в динамике (от 3х до 5-ти раз), что позволяет уточнить этиологию, проследить длительность персистенции возбудителя и эффективность проводимой терапии. Основной материал – мокрота. Сбор утром, после чистки зубов и полоскания свежекипяченой водой. При обильном выделении мокроты первые порции игнорировать, а последующие собрать в стерильную посуду с завинчивающейся крышкой. Если мокрота отделяется плохо, накануне дают отхаркивающее средство. Интервал между сбором и посевом материала не должен превышать 1-2 часа. (допускается хранение в холодильнике, но не более 6–ти часов). Кроме мокроты материал может быть представлен промывными водами бронхов, лаважной жидкости.
Лабораторное исследование мокроты складывается из: бактериоскопического исследования нативного материала и бактериологического исследования с применением качественного и количественного метода первичного посева
БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД. Готовятся мазки из мокроты, окрашиваются по методу Грама. Изучаются свойства микроорганизмов (форма, взаиморасположение клеток в мазке, тинкториальные свойства) привлекают внимание капсульные диплококки (пневмококки), мелкие Гр(-) палочки (палочка Пфейффера) и др., преобладающие микроорганизмы, наличие лейкоцитов, альвеолярного эпителия и внутриклеточного расположения бактерий. Гнойная мокрота содержит так называемые клетки воспаления - полиморфно-ядерные лейкоциты (ПЯЛ), собственно слюна – главным образом эпителиальные клетки. Если под малым увеличением в поле зрения > 10 эпителиальных клеток, а ПЯЛ < 25 – это некачественно полученный материал и не целесообразен его посев.
|
|
|
КАЧЕСТВЕННЫЙ МЕТОД. Мокроту выливают в чашку Петри, с помощью физ.раствора отмывают 2-3 гнойных комочка и засевают на кровяной ЖСА, Эндо и Сабуро. Посев делают стеклянным шпателем, равномерно по всей поверхности. На чашку с кровяным агаром накладывают диски со стрептомицином и левомицетином, что позволяет получить экспресс - информацию о чувствительности доминирующей в мокроте микрофлоры. Из промывных вод, лаважной жидкости также отбирают комочки слизи, но не отмываются и засеваются на плотные среды и в пробирку с сахарным бульоном. Если комочки отсутствуют, слизь засевают пастеровской петлей.
На 2-й день учитывается однородность или ассоциативность роста, количество выросших колоний одного типа (этиологически значимым считается рост > 50 колоний) и чувствительность к антибиотикам при условии роста монокультуры.
КОЛИЧЕСТВЕННЫЙ МЕТОД. К 1 мл мокроты добавляют 9 мл МПБ, перелить во флаконы со стеклянными бусами и добиваться гомогенизации в течение 20 мин. Из полученного разведения 10-1 готовят десятикратные последовательные разведения до 10-7 в объеме 10мл.
На кровяной агар делают посевы по 0.1 из разведений 10-1, 10-3, 10-5, 10-7 , причем каждый посев дублируется. Один набор из 4х чашек инкубируется в обычном термостате при 37 0 С, второй набор – в микроанаэростате или в эксикаторе со свечой. Такие же разведения в том же объеме засевают на «шоколадный агар». На ЖСА, среды Эндо и Сабуро делается посев по 0,1 мл из разведения 10-1 Инкубация в термостате при 370 18-24 часа. Во время второго дня исследования просматриваются посевы, подсчитывается число колоний каждого вида, диагностически значимым признается содержание в 1 мл. мокроты 104 и выше клеток микроорганизма. Далее производят микроскопию материала колоний, пересев на среды для выделения чистой культуры. В последующие дни – идентификация выделенной культуры и определение чувствительности её к антибиотикам.
Вопросы к разделу «Пневмония»:
1. Перечислите показания к микробиологическому исследованию
2. Особенности забора материала для исследования
3. Сформулируйте цель микробиологического исследования
4. Перечислите основных возбудителей внутрибольничных пневмоний
5. Опишите бактериоскопический метод диагностики
6. Бактериологический метод исследования – качественный и количественный
А) первичный посев материала общепринятым и количественным методом
Б) оценка посевов, изучение выросших колоний, их подсчет и определение степени обсемененности
В) отбор колоний для дальнейшего изучения
7. Чем определяется выбор методов идентификации выделенных культур
8. Интерпретация результатов исследования.
ПОСЛЕОПЕРАЦИОННЫЕ ИНФЕКЦИИ
Послеоперационные инфекции могут быть обусловлены эндогенными и экзогенными факторами.
Эндогенные: иммунный статус больного, аутофлора
Экзогенные: физические и химические факторы внешней среды стационара, микрофлора отделения, ее качественные и количественные характеристики, гигиенический режим ЛПУ.
Хирургическая рана (как и всякая другая – производственная, бытовая, ожоговая) нарушает целостность кожи и слизистых покровов, повреждает химические барьеры, препятствующие внедрению и колонизации нетипичных микроорганизмов, изменяет количественные характеристики нормальной микрофлоры. Развитие осложнений наблюдается чаще у групп риска:
-пациенты с различными типами иммунодефицитов, больных сахарным диабетом, нарушением питания и др.
-послеоперационные больные, которым имплантированы субстраты из синтетических материалов или животных тканей, что может служить средой для развития микроорганизмов. При этом они, как правило, непроницаемы для фагоцитов, антител и антибактериальных препаратов.
- Пациенты с различного рода инородными телами временного пребывания (катетеры, дренажные трубки, шовный материал), которые могут изначально обсеменены микроорганизмами, служить дополнительным материалом для адгезии некоторых бактерий (P. aеruginosa).
В любом случае ткани в месте вмешательства повреждены, здесь нарушено кровообращение, что с одной стороны способствует микробной инвазии, а с другой снижает возможность развития адекватных воспалительных и иммунных реакций.
Применение антибиотиков и антисептиков с профилактической целью одновременно, подавляя факультативную микрофлору, облегчает колонизацию патогенными и множественноустойчивыми бактериями.
РАНЕВЫЕ ИНФЕКЦИИ
Четыре категории ран, потенциально опасных в отношении развития инфекции:
- чистые раны: непроникающие ранения груди и живота, нанесенные в асептических условиях или без признаков воспаления. Сюда относятся раны при гастроэктомиях, холециетэктомиях, аппендэктомиях (при отсутствии первичного воспаления). Частота инфицирования 5-7%.
- условно-контаминированные раны. Поражения с вовлечением мышечной стенки полых органов без значительного обсеменения факультативной микрофлорой: разрезы при вмешательстве на воздухоносных путях и органов ЖКТ, с минимальным заносом бактерий, контаминирующих стерильные ткани, частота инфицирования не превышает 11%.
- инфицированные раны - поражения с острым воспалительными явлениями значительной контаминацией микроорганизмами, главным образом из полых мышечных органов, но без гнойного отделяемого. К таким контаминированным ранам относят также обширные поражения в асептических условиях. Частота инфицирования 15,2-21,9 %.
- гнойные раны - характеризуются обильным гнойным отделяемым. К ним также относят раны, возникающие при перфорации органов, при наличии очагов хронического воспаления (например, изъявление пролежней). Частота инфицирования- 22-40 %.
Обсеменение микроорганизмами не всегда ведет к развитию инфекции, поэтому его надо рассматривать как фактор риска. Наличие гнойного отделяемого говорит о развитии инфекции.
Т.о. отделяемое раны до признаков гнойного осложнения может исследоваться с прогностическими целями: наличие возбудителя, его вид, штаммовая характеристика, в т.ч. чувствительность к антибиотикам. Исследование гнойного отделяемого преследует целью установить этиологию развившейся инфекции.
Возбудители гнойно-воспалительных процессов: Staphylococcus spp., Streptococcus sp, Pseudomonas spp, Escherichia, Proteus, Citrobacter, Klebsiella, Enterobacter, Acinetobacter, Haemophilus, Candida, Actinomyces
НТД отбора, исследования и оценки: Приказ МЗ СССР № 535 от 22.04.85 г. «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».
Дата добавления: 2018-02-28; просмотров: 338; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!