Алгоритм взятия кала на бактериологический посев
Общим недостатком бактериологического метода является длительность исследования.
Это связано с тем, что микробы растут медленно, поэтому окончательный результат может быть
получен только через 2-4 дня, а иногда и позже. Для каждого микроба требуется соответствующая
питательная среда. В тех случаях, когда диагноз больного неясен, посевы производят одновременно
на нескольких питательных средах. Как правило, бактериологическое исследование предусматри -вает одновременное определение чувствительности выделенного микроба к основным группам
антибиотиков и химиопрепаратов, что необходимо для выбора оптимальной этиотропной терапии.
При проведении бактериологического исследования оптимальным условием является макси-
мальнобыстрая доставка материала в лабораторию (строго в течение 1-2 часов).
Посев крови, например, осуществляют только непосредственно у постели больного. В тех случаях, когда быстрая доставка материала в лабораторию невозможна, используют консервиру -
ющие смеси, которые имеют различный состав в зависимости от целей бактериологического исследования. Взятый на исследование материал без консерванта при комнатной температуре
хранить нельзя, поскольку в нем происходит размножение сопутствующей (сапрофитной) микро-
флоры и возникают аутолитические процессы, которые губительно воздействуют на патогенную флору. При отсутствии в отделении консервирующих смесей материал до посева нужно хранить
|
|
|
в холодильнике при Т+4 или на льду.
Правила взятия материала на бактериологическое исследование
1.Для сбора материала должна использоваться только стерильная посуда! Не содержащая даже
следов дезинфицирующих средств!
2.Забор материала должен происходить в стерильных условиях, при этом необходимо исключить
загрязнение взятого материала посторонней микрофлорой.
Посев крови - гемокультура
Кровь для посева следует брать с соблюдением всех правил асептики с целью исключения попа-
дания микроорганизмов из внешней среды. Посев крови лучше всего делать в начальном периоде
болезни или в разгаре, сразу после озноба (наиболее выраженная бактериемия). Посев крови про-
изводится на жидкие питательные среды (Раппопорта, сахарный, сывороточный, желчный бульоны). Состав среды выбирается в зависимости от биологических особенностей возбудителя
предполагаемой у больного инфекции.
Чтобы избежать влияния бактерицидных свойств крови, ее необходимо разводить большим
количеством среды, примерно в соотношении 1:10 ( крови к среде -5мл крови- на 50 мл среды, 10мл крови на 100мл среды).
|
|
|
Стерильные шприц и иглы, используемые для взятия крови, нельзя проверять на проходимость воздухом. Кровь забирают из локтевой вены в стерильный шприц либо у постели больного, либо
в процедурном кабинете. Переливать кровь во флакон со средой следует над пламенем спиртовки.
Предварительно обжигается горлышко флакона, подставляется флакон под струю крови из
шприца, затем повторно обжигает горлышко и пробку флакона и закрывает их. Флакон с питательной средой и кровью необходимо в тот же день доставить в бак. Лабораторию или поместить в термостат при Т +37гр.
Методика взятия крови на гемокультуру
Кровь на гемокультуру берут из вены с соблюдением правил асептики в среду Раппопорта или другую, предусмотренную инструкцией среду, соблюдая соотношение 1:10 (крови к среде).
Показания:
1.Лихорадящий более 5 дней пациент, с неясным диагнозом.
2.С диагнозами: брюшной тиф, паратифы А и Б, сальмонеллез, лептоспироз и др.
Условия взятия:
1.До начала лечения антибиотиками.
2.Если пациент принимал антибактериальные препараты, необходимо указать какие, дозу, как долго.
Для взятия крови на гемокультуру необходимо подготовить:
1.Стерильные перчатки.
2.Защитный экран.
|
|
|
3.Среду Раппопорта (или другую среду).
4.Спирт.
5.Спиртовку, спички.
6.Шприц с иглой.
7.Валик, жгут.
8.Стерильные ватные шарики с салфеткой или одноразовые стерильные спиртовые салфетки.
9. Лоток для стерильного материала.
10.Стерильный пинцет.
11.Лоток для отработанного материала (сброс использованных игл, шприца, пинцета, ватных шариков).
12.Емкость с дезинфекционным раствором.
13.Направление.
Алгоритм взятия крови на гемокультуру
1.Подготовить для манипуляции все, что указано в методике.
2.Объяснить пациенту цель исследования.
3.Усадить или уложить пациента на спину.
4.Надеть стерильные перчатки, защитный экран.
5Попросить пациента максимально разогнуть руку.
6.Положить валик под локоть пациента.
7.Наложить жгут на середину плеча.
8.Попросить пациента «поработать кулаком».
9.Попросить пациента зажать кулак.
10.Обработать кожу локтевого сгиба спиртом двукратно (большое поле, малое поле).
11.Ввести в вену иглу.
12.Набрать кровь в шприц, учитывая соотношение крови к среде (1:10).
13.Снять жгут, извлечь иглу.
14.Прижать ватку со спиртом в месте инъекции.
15.Положить шприц с иглой в лоток на салфетку сверху.
16.Снять с флакона со средой пробку с бумажным колпачком и положить на салфетку сверху, не
|
|
|
снимая бумажного колпачка.
17.Зажечь спиртовку.
18.Обжечь горлышко флакона со средой в пламени спиртовки.
19.Снять иглу со шприца и медленно по стенке перелить кровь во флакон со средой.
20.Обжечь горлышко флакона со средой, обжечь пробку.
21.Закрыть флакон пробкой и бумажным колпачком.
22.Написать направление в бактериологическую лабораторию.
23.Весь использованный материал (шприц, иглу, перчатки, ватные шарики продезинфицировать в
емкости с дезинфицирующим раствором.
Посевы испражнений - копрокультура
Показания:
Производятся при кишечных инфекциях (брюшной тиф, паратифы А и Б, дизентерия, сальмонелле-
зы, эшерихиозы и др.), а также когда возникает подозрение на кишечные инфекции или имеются
признаки поражения желудочно-кишечного тракта.
Методика забора кала для бактериологического исследования
Сбор испражнений может осуществляться разными способами: из унитаза, горшка, судна, пеленки
ребенка, т.е.из «открытого стула», а также непосредственно из прямой кишки с помощью петель.
Кал из «открытого стула» берут, если невозможно взять его из прямой кишки (при тяжелом тече-
нии дизентерии, эшерихиозе, при геморрое и др.).
Судно или горшок предварительно промывают кипятком, поскольку в них не должно содержать-
ся остатков дезинфицирующих средств, губительно действующих на патогенные микробы.
Материал забирается сразу после дефекации стерильным шпателем , палочкой или стерильной петлей из 3-5 мест (не более 10 гр) и переносится в стерильную пробирку со средой или в специаль-
ный патрон с плотно закрывающейся пробкой. Для исследования нужно брать слизь, гной, фиб-
риновые пленки, избегая примеси крови, так как в ней содержатся бактерицидные вещества, разрушающие микробы. Взятый на исследование материал следует как можно быстрее доставить в лабораторию и засеять на питательную среду, поскольку срок хранения испражнений в стерильной
посуде ограничен двумя часами и по истечению этого срока материал уже не пригоден для дальнейшего исследования.
Взятие испражнений на исследование может осуществляться и непосредственно из прямой киш-
ки с помощью металлической петли.
Необходимо подготовить:
1.Стерильные перчатки.
2.Стерильные пробирки со средой или современные одноразовые пробирки с консервантом.
3.Спирт, спиртовка, спички.
4.Емкость с дезинфицирующим раствором.
5.Бланк направления
6.Стеклограф.
Алгоритм взятия кала на бактериологический посев
1.Подготовить пробирку со средой и петлей (в штативе), промаркировать стеклографом и выписать
направление.
2.Объяснить пациенту цель исследования, как будете проводить взятие кала.
3.Уложить пациента на кушетку на бок (желательно на левый) с согнутыми и подтянутыми к
животу ногами.
4.Зажечь спиртовку.
5.Надеть стерильные перчатки
6.Левой рукой раздвинуть ягодицы пациента.
7.Петлю из пробирки взять в правую руку.
8.Ввести петлю в прямую кишку на глубину 5-6-8 см, сделать легкое вращательное движение петлей.
9.Вывести петлю из прямой кишки.
10.Обжечь края пробирки над пламенем спиртовки.
11.Погрузить петлю в пробирку со средой, не касаясь краев пробирки и оставить ее в пробирке.
12.Закрыть пробирку пробкой, с направлением отправить в бактериологическую лабораторию.
13.Использованные перчатки сбросить в емкость с дезинфицирующим раствором.
Посев мочи - уринокультура
В стерильную, плотно закрывающуюся посуду собирают среднюю порцию свободно выпущенной мочи в количестве 5-10мл, после тщательного туалета половых органов. Катетеризация мочевого
пузыря обычно не применяется, поскольку велика вероятность инфицирования мочевых путей.
Она производится только в исключительных случаях, когда требуется уточнение локализации
воспалительного процесса (в мочевом пузыре или в почках). Материал следует брать до начала
антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения.
Необходимо подготовить:
1.Стерильная посуда с плотной крышкой.
2.Мыло, стерильный физраствор или фурацеллин.
3.Для детей – стерильные одноразовые мочеприемники.
4.Бланк направления.
Алгоритм взятия мочи на бактериологический посев
1.Подготовить для манипуляции все, что указано в методике.
2.Объяснить пациенту цель исследования.
3.Провести тщательный туалет половых органов.
4.Собрать среднюю порцию мочи в стерильную посуду.
5.Написать направление.
6.Отправить в бактериологическую лабораторию в течение 2-х часов.
Посев желчи - биликультура
Желчь (10-20мл) забирают во время дуоденального зондирования в процедурном кабинете отдельно
по порциям А, В, С в три стерильные пробирки с соблюдением всех правил асептики. Полученные
порции желчи должны быть доставлены в лабораторию не позднее, чем через 1-2час от момента
взятия.
Цель:выявление возбудителя заболевания.
Показания:брюшной тиф, паратифы А и В.
Необходимо подготовить:
1.Стерильные перчатки, маска, фартук, бланк направления, стеклограф.
2.Три стерильные пробирки с пробками, штатив.
3.Стерильный зонд для дуоденального зондирования с метками через 10см
4.Стерильные шпатель, шприц(20мл), зажим.
5.Дистилированная вода.
6.Спирт 70%, стерильные ватные шарики.
7.Лоток со стерильным материалом.
8.Лоток для отработанного материала.
9.Спиртовая горелка, спички.
10.Емкость с дезинфицирующим раствором.
Алгоритм взятия желчи на бактериологический посев.
1.Оформить направление.
2.Подписать стеклографом три пробирки (АВС).
3.Объяснитьпациенту цель исследования.
4.Усадить на кушетку или уложить.
5.Одеть перчатки, маску, фартук.
6.Взять зонт для дуоденального зондирования, отмерить расстояние от козелка ушной раковины
до подбородка и вниз до 12-ти перстной кишки, отметить карандашом.
7.Дистальный конец зонда смочить дистиллированной водой, язык прижать шпателем и по нему вводить зонд до отметки.
8.Другой конец зонда обработать 70% спиртом, затем после выделения 1-2 мл желчи наполнить
пробирки непосредственно через зонд или с помощью стерильного шприца.
9.Зажечь спиртовку, обжечь края пробирки, пробку (закрыть пробирку).
10.Отправить в бактериологическую лабораторию.
11.Отработанный материал (перчатки, зонд, шприц) сбросить в емкость с дезинфицирующим раствором.
ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА – ОСНОВНОЕ ЗВЕНО ПРИ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ. Не ставится окончательный диагноз без лабораторного подтверждения при таких инфекционных заболеваниях, как корь, краснуха (анализ крови на вирус данных заболеваний
отправляем в Нижний Новгород), полиомиелит (анализы крови, кала отправляем в Санкт-Петербург), брюшной тиф, сальмонеллез. А дизентерию могут поставить клинически, несмотря на
отрицательный бактериологический анализ, но положительную копрограмму и клинику.
Для расшифровки вирусных гепатитов необходимо провести анализ крови на маркеры гепатитов (АЕВСД), чтобы правильно провести противоэпидемические мероприятия, лечение, диспансериза-
цию и профилактику.
При паразитарных заболеваниях очень актуальна лабораторная диагностика, так как энтеробиоз, лямблиоз, аскаридоз, трихинеллез и др. имеют абсолютно разный подход к лечению.
Эпидемиологи Роспотребнадзора г. Саратова требуют от работников ЛПУ г. Саратова расшифровки всех инфекционных заболеваний.
Рассмотрим данные по лабораторной диагностике ОКИ по Саратовской области.
| Наименование заболеваний | 2007год(на 100тыс) | 2008год(на100тыс) | 2009год(на100тыс) |
| ОКИ, вызв.устан. возбудителем | 2812 (107,81) | 2925(112,70) | 4378 (169,44) |
| ОКИ, неустан.возбуд. | 8516 (326,49) | 8345(321,54) | 8687 (336,21) |
| Сальмонеллез | 689 (26,42) | 775 (29,88) | 905 (35,03) |
| Дизентерия | 274 (69,72) | 158 (54,88) | 131 (73,60) |
3775/8516=12.291 3858/8345=12.203 5414/8687=14.101
31%подтв. 32% подтв. 62% подтв.
При проведении анализа за 2007-2008годы эпидемиологи были недовольны маленьким процентом
расшифровки инфекционных заболеваний. Были организованы проверки ЛПУ, где проверяли технику забора анализов, сроки и правильность отправки анализов в лаборатории. А в лабораториях
проверяли правильность изготовления сред и сроки реализации реактивов и др.
Дата добавления: 2021-03-18; просмотров: 104; Мы поможем в написании вашей работы! |
Мы поможем в написании ваших работ!