Количественное определение каталазы крови



Принцип: _______________________________________________________________________________________________________________

Пробы (в стаканчиках) Разведенная кровь 1: 1000 Дист. вода Н2О2 1% раствор Н2SО4 10% р-р Экспозиция Н2О2 1% раствор Н2SО4 10% р-р Кол-во 0,1 М р-ра KMnO4 в мл, пошедшего на титрование Каталазное число (КЧ)=(А-В)*1,7 = ? мг
Опыт 1 мл 7 мл 2 мл -

30 мин. при комн. темпер.

- 5 мл В=?

 

КЧ=______________

 

 

Контроль 1 мл 7 мл - 5 мл 2 мл - А=?

Вывод:______________________________________________________________________________________________________________

 

В норме каталазное число = 10-15.

 

Таблица 2

Обнаружение дегидрогеназ цикла Кребса

Принцип: _______________________________________________________________________________________________________________

 

№ пробы Мышечная ткань 3% р-р цитрата натрия 3% р-р сукцината натрия 20% р-р сульфосалициловой кислоты 0,002% р-р метиленовой сини Вазелиновое масло Инкубация при 37°С Окрашивание раствора
№1 На конце шпателя 10 кап. - - 10 кап. 10 кап. 30 мин ?
№2 На конце шпателя - 10 кап. - 10 кап. 10 кап. 30 мин ?
№3 На конце шпателя - - 10 кап. 10 кап. 10 кап. 30 мин ?

 

Вывод:______________________________________________________________

Подпись преподавателя                                                                        __________________


 «___»_________20____ г.

Занятие № 14 Тема: Биологическое окисление. Исследование действия полифенолоксидазы. Определение активности пероксидазы.

Цель: изучить строение и функционирование митохондриальной дыхательной цепи ферментов. Механизм окислительного фосфорилирования, процесс свободнорадикального окисления. Научиться определять количественно активность пероксидазы в растительном сырье и обнаруживать действие полифенолоксидазы (качественная реакция).

Вопросы для обсуждения.

1. Понятие тканевого дыхания.

2. Определение первичного субстрата биологического окисления.

3. Особенности строения цепи дыхательных ферментов в митохондриях.

4. Механизм сопряжения фосфорилирования АДФ с окислительным процессом в дыхательной цепи.

5. Хемоосмотическая гипотеза сопряжения фосфорилирования и окисления.

6. Характеристика оксидазного и оксигеназного типов окисления.

7. Характеристика свободнорадикального окисления и его роль в развитии патологических состояний.

8. Роль антиоксидантов и их использование в качестве лекарственных препаратов.

Выполняемая работа.

Работа № 1. Определение активности пероксидазы в растительном материале.

Работа № 2. Исследование действия полифенолоксидазы.

Полифенолоксидаза ускоряет реакцию окисления фенолов (например, адреналина) в присутствии кислорода. Активность полифенолоксидазы обнаруживают по изменению окраски раствора за счет образования продуктов окисления адреналина.

Ход работы:

Для получения ферментного препарата полифенолоксидазы сырой картофельный клубень очищают от кожуры, верхний слой клубня в количестве 2,0 г. кусочками нарезают в ступку, растирают с 10 мл дистиллированной воды и фильтруют через два слоя марли или через складчатый фильтр из бумаги. Фильтрат содержит как полифенолоксидазу, так и пероксидазу и поэтому может быть использован в работе по определению активности пероксидазы и активности полифенолоксидазы.

В 2 пробирки отмеривают по 1 мл полученного фильтрата. Содержимое первой пробирки кипятят в течение 2-х минут и затем охлаждают в струе водопроводной воды. В обе пробирки добавляют по 0,5 мл 0,1% р-ра адреналина, содержимое пробирок перемешивают для лучшего соприкосновения с воздухом и помещают в термостат. Постепенно в одной из пробирок под действием полифенолоксидазы жидкость изменяет свою окраску за счет образования продуктов окисления адреналина – вначале адренохрома, а затем типа меланина.

В пробирке, где фермент инактивирован кипячением, цвет жидкости не меняется.


Таблица 1

Исследование действия пероксидазы

Принцип: _____________________________________________?

 

Исследуемый материал (приготовление водной вытяжки) Фильтрат водной вытяжки Ацетатный буфер 0,1 М р-р рН=5,4 Р-р бензидина 0,92 г/л Н2О2 0,03% р-р после помещения в ФЭК Время реакции (достижение значения Е=0,25 на ФЭКе)

100 мг растит. материала (капуста) + 10 мл дистилл. воды, растирание в ступке, помещение в колбу и доведение водой до объема 25 мл, настаивание 10 мин, фильтрация

2,0 мл 2,0 мл 2,0 мл 2,0 мл

-

х=                          [с-1/кг]

2,0 мл 2,0 мл 2,0 мл 2,0 мл

 

Вывод:___________________________________ ________________________________________________________________________

Таблица 2


Дата добавления: 2018-02-15; просмотров: 1352; Мы поможем в написании вашей работы!

Поделиться с друзьями:






Мы поможем в написании ваших работ!